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見えない職人たち – コーヒー発酵の微生物叢が生み出す風味の秘密

コーヒー発酵の微生物学とメタゲノミクス

1. 序論:発酵と情報変換の視点

コーヒーの生産過程において、発酵は単なる加工工程ではなく、情報的に重要な転換点である。生豆に内在する潜在的風味と生理活性成分の情報構造が、微生物の代謝活動を介して劇的に再編成される段階であり、最終的な風味プロファイルと生物活性の多様性を決定する重要なステップである。

従来のコーヒー発酵研究は主に官能特性の向上に焦点を当て、微生物学的視点も伝統的な培養法に制限されていた。しかし、次世代シーケンシング技術とメタゲノミクスの発展により、コーヒー発酵の微生物学的理解は革新的に進展している。これら先端技術の適用は、発酵に関与する微生物叢(マイクロバイオーム)の全体像を明らかにし、特に「培養困難な微生物」の存在と機能を解明している。

本稿では、コーヒー発酵を「情報変換プロセス」として再概念化し、微生物叢の複雑な生態系とその代謝活動が、どのようにして化学的情報構造を変換するかを探究する。特に、異なる発酵方法(乾式、湿式、半湿式)における微生物群集構造の違いと、それが最終的な風味形成に及ぼす影響を検証する。さらに、メタゲノミクス、メタトランスクリプトミクス、メタプロテオミクス、メタボロミクスなどの統合的アプローチによる最新知見を基に、発酵を精密に制御するための「設計発酵」の可能性について考察する。

この理解は、単なる学術的関心を超え、特定の風味プロファイルを目指した微生物スターターカルチャーの開発、産地特有の「発酵フィンガープリント」の保存、そして発酵コーヒーの健康機能性の最適化など、実践的応用への道を開くものである。

2. コーヒー発酵の基礎:生化学的転換の全体像

コーヒー発酵は多段階的なプロセスであり、果肉除去からコーヒー豆の乾燥に至るまで、複雑な生化学的変化が連鎖的に生じる。この過程を情報変換の観点から再評価することで、微生物の役割と風味形成メカニズムの理解が深まる。

2.1 発酵の生化学的基盤

コーヒーチェリーはその構造と化学組成が微生物にとって理想的な培地を形成している:

  1. 果肉と粘液質の組成:コーヒーチェリーの外果皮、中果皮、内果皮、そして特に粘液質層は、微生物の栄養源となる複雑な化合物で構成されている:
    • 炭水化物:ガラクトース、アラビノース、ラムノースなどの多糖類(15-18%)
    • 単糖類:グルコース、フルクトース、シュクロース(6-9%)
    • ペクチン質:高度にメチル化されたペクチン(5-7%)
    • タンパク質:水溶性タンパク質(2-3%)
    • ミネラル:K、Ca、Mgなどのイオン
  2. pH環境の変化:発酵開始時、粘液質のpHは約6.0-6.5の中性付近だが、微生物活動に伴い急速に酸性化し、発酵終了時には約3.5-4.5に低下する。このpH勾配が微生物種の逐次的遷移を誘導する。
  3. 酸素勾配:発酵槽内部では深さに応じた酸素濃度勾配が形成され、表層では好気的環境、内部では微好気的あるいは嫌気的環境が生じる。この空間的不均一性が、異なる微生物群の棲み分けと共存を可能にする。

2.2 主要微生物群の逐次的遷移

コーヒー発酵は単一種による単純な過程ではなく、複数の微生物群が時間的に遷移する複雑な生態系である:

  1. 酵母優勢相(初期段階: 0-20時間):
    • 主要種:Saccharomyces cerevisiaePichia kluyveriHanseniaspora uvarumMeyerozyma caribbica
    • 代謝機能:単糖類の分解、アルコール発酵、エステル系香気成分の生成
    • 代謝産物:エタノール、酢酸エチル、高級アルコール、フェネチルアルコールなど
  2. 乳酸菌優勢相(中期段階: 20-48時間):
    • 主要種:Lactobacillus plantarumL. fermentumL. brevisLeuconostoc mesenteroides
    • 代謝機能:乳酸発酵、pH低下、抗菌物質産生
    • 代謝産物:乳酸、ジアセチル、アセトイン、バクテリオシン
  3. 酢酸菌優勢相(後期段階: 36-72時間):
    • 主要種:Acetobacter pasteurianusA. acetiGluconobacter oxydans
    • 代謝機能:アルコールの酸化、過酸化物の生成、発熱反応
    • 代謝産物:酢酸、グルコン酸、ケトグルコン酸
  4. バチルス属・糸状菌相(最終段階: >48時間、主に乾式発酵):
    • 主要種:Bacillus subtilisB. cereusAspergillus spp.、Penicillium spp.
    • 代謝機能:タンパク質分解、複合多糖類分解
    • 代謝産物:アミノ酸、ペプチド、フェノール化合物

この逐次的遷移は単なる時間的変化ではなく、各微生物群が前の群の代謝産物を基質として利用し、次の群のための環境を準備する「生態学的リレー」として機能している。

2.3 発酵方法による微生物叢の差異

発酵方法は微生物叢の構成と遷移に決定的な影響を与え、結果として風味特性の多様性をもたらす:

  1. 乾式発酵(Natural Process)
    • 微生物学的特徴:糸状菌の多様性が高く、特にAspergillusPenicilliumFusarium属が豊富
    • 酵母種の優勢:Pichia spp.、Debaryomyces spp.が特徴的
    • 発酵期間:通常7-21日間と長期
    • 特徴的代謝産物:複雑なエステル類、高級アルコール、テルペノイド
  2. 湿式発酵(Washed Process)
    • 微生物学的特徴:乳酸菌と酢酸菌の計画的遷移、糸状菌の減少
    • 酵母種の優勢:Saccharomyces spp.、Hanseniaspora spp.が主体
    • 発酵期間:12-72時間と比較的短期
    • 特徴的代謝産物:有機酸(主に乳酸、クエン酸)、アルデヒド類
  3. 半湿式発酵(Pulped Natural/Honey Process)
    • 微生物学的特徴:湿式と乾式の中間的特性、粘液質の部分的残存による選択的発酵
    • 酵母種の優勢:Meyerozyma spp.、Wickerhamomyces spp.の特徴的増加
    • 発酵期間:3-8日間の中期発酵
    • 特徴的代謝産物:バランスのとれたエステル類と有機酸

これらの方法による微生物叢の差異は偶然ではなく、特定の環境条件(水分活性、酸素利用性、基質組成など)が特定の微生物群を選択的に促進した結果である。この「生態学的設計」が各発酵方法に特有の風味特性をもたらしている。

2.4 地域特異的微生物叢とテロワール

特に興味深いのは、地域固有の微生物叢(「発酵フィンガープリント」)が存在し、これが地域特有の風味特性に寄与している可能性である:

  1. 地域特異的微生物群
    • エチオピア特有:Pichia fermentansの高頻度出現、特定のLactobacillus系統の優勢
    • 中南米特有:Leuconostoc spp.の多様性、特定のBacillus亜種の優先
    • インドネシア特有:Aspergillus spp.の多様性、Erwinia spp.の存在
  2. 環境因子と微生物叢の関連
    • 標高との相関:高地ほどPichia spp.や特定のLactobacillus種の頻度が増加
    • 土壌組成との関連:火山性土壌では特定のBacillus種や酢酸菌株の優勢が観察
    • 気候との関連:降水量と湿度が微生物種の多様性指数と正の相関を示す
  3. 農法と微生物叢
    • 有機栽培:Gluconobacter spp.と非培養性細菌の多様性が増加
    • シェード栽培:特定の内生菌と共生微生物の優勢化

この地域特異的微生物叢は、テロワール(地域特性)の生物学的要素として機能し、各産地のコーヒーに独自の「微生物的署名」を与えている。

3. メタゲノミクスと統合オミクス:発酵微生物叢の包括的解析

従来の培養法では発酵に関与する微生物の5%未満しか検出できなかったが、メタゲノミクスの登場により培養に依存しない包括的な微生物叢解析が可能になった。これにより、コーヒー発酵の理解は質的に新しい段階に入っている。

3.1 メタゲノミクス技術の進化と応用

コーヒー発酵研究におけるメタゲノミクス技術の発展は3つの段階に分けられる:

  1. 初期アプローチ(2010-2015)
    • 16S/ITS増幅子シーケンス:細菌と真菌のリボソームRNA遺伝子を標的とした分類学的プロファイリング
    • DGGE/T-RFLP:変性勾配ゲル電気泳動や末端制限断片長多型解析による簡易的プロファイリング
    • 制約:分類解像度の限界(多くの場合、属レベルに留まる)、機能的情報の欠如
  2. 発展期(2015-2020)
    • ショットガンメタゲノミクス:全DNA抽出物の非選択的シーケンシングによる網羅的解析
    • メタトランスクリプトミクス:発現しているRNA解析による活性微生物群の同定
    • 制約:データ解析の複雑さ、リファレンスゲノムの不足
  3. 最新アプローチ(2020-現在)
    • ロングリードシーケンシング:PacBioやOxford Nanoporeによる長鎖DNA解読
    • シングルセルゲノミクス:個別細胞の分離とゲノム解析による高解像度分析
    • 多層オミクス統合:メタゲノム、メタトランスクリプトーム、メタプロテオーム、メタボロームの統合解析

これらの技術的進化により、コーヒー発酵の微生物叢について以下の新知見が得られている:

  • 培養困難な微生物の検出:従来の培養では得られなかったSphingomonasErwiniaNeokomagataeaなどの存在確認
  • 機能遺伝子レパートリーの解明:発酵関連酵素(ペクチナーゼ、プロテアーゼなど)の多様性マッピング
  • 微生物間相互作用の解明:代謝的相補性や拮抗的相互作用の分子基盤の特定

3.2 微生物多様性の新たな全体像

メタゲノミクス研究により、コーヒー発酵の微生物多様性は従来の理解を大きく超えることが明らかになった:

  1. 細菌群集の多様性
    • 優勢門:Proteobacteria(30-45%)、Firmicutes(25-40%)、Actinobacteria(5-15%)、Bacteroidetes(3-10%)
    • 非培養性細菌:TatumellaPantoeaGluconacetobacterなどの重要性が再認識
    • 希少種の役割:存在比率が1%未満でも代謝的に重要な菌群(AcinetobacterWeissellaなど)の同定
  2. 真菌群集の多様性
    • 優勢門:Ascomycota(80-95%)、Basidiomycota(3-15%)、Zygomycota(1-3%)
    • 非培養性真菌:YamadazymaStarmerellaTorulasporaなど新たな関与が判明
    • 内生菌の役割:豆内部に存在する内生菌(ColletotrichumCladosporiumなど)が発酵中に活性化
  3. ウイルス学的成分
    • バクテリオファージ群:細菌個体群動態の調節者として機能
    • マイコウイルス:真菌代謝に影響を与える可能性
  4. 細菌-真菌相互作用
    • 相補的代謝:酵母が生成したアルコールを酢酸菌が酢酸に変換する連鎖的代謝
    • クオラム検知:種間シグナル分子を介した協調的発酵活動
    • 微生物間拮抗:特定の乳酸菌株による抗菌ペプチド(バクテリオシン)分泌

これらの知見は、コーヒー発酵が単一種の活動ではなく、高度に相互接続された生物学的ネットワークであることを示している。

3.3 機能的メタゲノミクス:代謝ポテンシャルの解読

微生物叢の分類学的組成を超えて、機能的メタゲノミクスはそれらの「機能的能力」—発現している遺伝子群と酵素活性—を解明することを可能にした:

  1. 炭水化物活性酵素(CAZyme)プロファイル
    • ペクチン分解酵素:ポリガラクツロナーゼ、ペクチンリアーゼ、ペクチンエステラーゼなど
    • セルロース/ヘミセルロース分解酵素:エンドグルカナーゼ、キシラナーゼ、マンナナーゼなど
    • 主要貢献者:Leuconostoc spp.、Pichia spp.、Bacillus spp.
  2. 風味関連代謝経路
    • アルコール生成:ピルビン酸デカルボキシラーゼ、アルコールデヒドロゲナーゼ遺伝子
    • エステル合成:アルコールアセチルトランスフェラーゼ(ATF)ファミリー
    • アミノ酸代謝:アミノトランスフェラーゼ、デカルボキシラーゼ遺伝子
  3. ストレス応答と適応システム
    • 酸ストレス対応:H⁺-ATPase、アルギニンデイミナーゼ系
    • 酸化ストレス対応:スーパーオキシドジスムターゼ、カタラーゼ、ペルオキシダーゼ
    • エタノール耐性:熱ショックタンパク質、膜流動性調節遺伝子
  4. 二次代謝産物クラスター
    • ポリケタイド合成酵素(PKS)ファミリー
    • 非リボソームペプチド合成酵素(NRPS)クラスター
    • テルペノイド合成経路

とりわけ重要なのは、これらの機能的特性が発酵条件に応じて動的に変化することである。例えば、湿式発酵では初期にペクチン分解遺伝子群の発現が高く、後期には有機酸生成経路が活性化する。一方、乾式発酵では発酵全期間を通じてアロマ生成経路の持続的活性化が観察される。

3.4 メタトランスクリプトミクスからメタボロミクスへ:活性と代謝産物

最新の研究アプローチは、メタゲノミクス(存在する遺伝子の同定)からメタトランスクリプトミクス(発現している遺伝子の同定)へと進展し、さらにメタプロテオミクス(実際に機能しているタンパク質の検出)やメタボロミクス(産生された代謝産物の検出)へと展開している。この統合的アプローチにより、コーヒー発酵の分子的動態の全体像が明らかになりつつある:

  1. 発現ダイナミクス
    • 初期相(0-24時間):糖輸送体、解糖系酵素、アルコール発酵経路の高発現
    • 中期相(24-48時間):有機酸生成経路、芳香族アミノ酸代謝経路の発現上昇
    • 後期相(>48時間):ストレス応答遺伝子、二次代謝経路の活性化
  2. 代謝流束の変化
    • 主要炭素源の変遷:グルコース→フルクトース→ペクチン由来ガラクツロン酸
    • アミノ酸代謝の推移:バリン、ロイシン、フェニルアラニンの選択的異化
    • 脂質代謝の変化:中鎖脂肪酸から揮発性脂肪酸への変換
  3. メタボローム変化と風味前駆体
    • エステル類:酢酸イソアミル、酢酸2-フェネチル、乳酸エチルなどの増加
    • アルデヒド類:3-メチルブタナール、2-メチルブタナールの形成
    • 有機酸プロファイル:乳酸、酢酸、プロピオン酸、クエン酸の動的変化
    • フェノール性化合物:クロロゲン酸の部分的分解、遊離フェノール酸の増加

これらのオミクスデータの統合により、微生物の分類学的変化と代謝産物の蓄積の間の因果関係が明らかになっている。例えば、特定のエステル化合物の増加がPichia kluyveriの増殖と正の相関を示し、特定のアルデヒド類がLeuconostoc mesenteroidesの活性と関連していることなどが判明している。

4. 微生物間相互作用:生態学的ネットワークの構築

コーヒー発酵は単なる個別微生物の集合ではなく、高度に相互接続された生態学的ネットワークである。メタゲノミクス研究により、この複雑なネットワークの構造と機能が解明されつつある。

4.1 共生と競合の分子メカニズム

微生物間相互作用は発酵の進行と結果に決定的な影響を与える:

  1. 栄養的相互作用
    • 相互依存(クロスフィーディング):ある微生物の代謝産物が他の微生物の栄養源となる連鎖的関係
    • 例:酵母によるアミノ酸放出が乳酸菌の成長を促進、乳酸菌による有機酸生成が酢酸菌の増殖を支援
    • 分子基盤:特殊な輸送体、細胞外加水分解酵素の共進化
  2. 拮抗作用
    • 抗菌物質生産:バクテリオシン、有機酸、過酸化水素などの選択的抗菌物質
    • 競合的排除:同一栄養ニッチに対する資源競争
    • 例:特定のLactobacillus株による抗真菌性フェノール酸の生成が望ましくない糸状菌の成長を抑制
  3. シグナル交換
    • クオラムセンシング:種内・種間の細胞間コミュニケーション
    • 主要シグナル分子:アシルホモセリンラクトン(AHL)、オートインデューサー2(AI-2)
    • 機能:バイオフィルム形成、酵素産生の協調的制御
  4. 物理的相互作用
    • バイオフィルム形成:複数種による構造化された共存コミュニティ
    • コアグリゲーション:異種微生物間の直接的細胞接着
    • 例:酵母と乳酸菌の共凝集が観察され、代謝交換の効率化に寄与

これらの相互作用はランダムではなく、コーヒー発酵環境における長期的な共進化の結果形成された精密なネットワークを構成している。

4.2 ネットワーク解析と主要ハブ種の同定

メタゲノミクスデータに基づく共起ネットワーク分析により、発酵生態系の構造的特性が明らかになっている:

  1. ネットワーク構造
    • スケールフリー特性:少数の高度接続「ハブ」種と多数の低接続種という階層構造
    • モジュール性:機能的に関連した微生物群によるサブコミュニティの形成
    • ネットワーク安定性:攪乱に対する耐性と応答特性
  2. 主要ハブ種
    • Pichia kluyveri:多くの他種と正の相関を示し、アルコール発酵の中心的調整者
    • Lactobacillus fermentum:中期発酵の鍵種、pH調節とバクテリオシン生産による選択圧
    • Acetobacter pasteurianus:後期発酵の主要調整者、酸素利用と酸化的環境形成
  3. キーストーン種
    • 相対的存在量が少なくとも系全体の安定性と機能に不可欠な種
    • 例:Pantoea spp.、Leuconostoc spp.が特定条件下でこの役割を担う
    • 標識として:発酵成功の予測バイオマーカーとしての可能性

これらのネットワーク特性は、発酵プロセスの制御と設計の新たな視点を提供する。特定のハブ種やキーストーン種を標的とした介入が、発酵全体の軌道を効率的に修正できる可能性を示唆している。

4.3 遺伝的多様性と機能的冗長性

微生物叢の構造と機能についての興味深い洞察の一つは、分類学的多様性と機能的多様性の関係である:

  1. 機能的冗長性
    • 異なる分類群が同様の機能的役割を果たす現象
    • 例:ペクチン分解活性がBacillus spp.、Leuconostoc spp.、Pichia spp.など複数の分類群で共有
    • 安定性への寄与:特定の種が欠落しても機能が維持される「保険効果」
  2. 株レベルの多様性
    • 同一種内の異なる株が異なる代謝プロファイルを示す現象
    • 例:Lactobacillus fermentumの異なる株間でのバクテリオシン生産能、糖代謝プロファイル、ストレス耐性の違い
    • 意義:発酵の微細な調整と環境適応
  3. パンゲノム解析
    • 発酵由来の同一種内の複数株のゲノム比較
    • コアゲノム(共有遺伝子)と可変ゲノム(株特異的遺伝子)の区別
    • 例:Acetobacter pasteurianusのパンゲノム解析による地域特異的株の同定

この遺伝的多様性と機能的冗長性の関係理解は、発酵プロセスの堅牢性と可変性の基盤を提供し、微生物スターターカルチャーの設計において考慮すべき重要な側面である。

4.4 地域特異的マイクロバイオームの共進化

微生物叢の地域特異性は単なる環境条件の違いだけでなく、長期的な共進化過程の結果でもある:

  1. 地域的な共進化
    • 微生物-植物の共進化:地域特有のコーヒー変種と微生物叢の長期的相互作用
    • 適応的特性:特定の環境条件(温度、湿度、標高など)への共同適応
    • 例:エチオピア高地由来の微生物株の低温適応遺伝子群
  2. 人為的選択の影響
    • 伝統的発酵実践による無意識的な微生物選択
    • 発酵インフラ(発酵槽、乾燥床など)への微生物バイオフィルムの定着
    • 例:特定地域の伝統的木製発酵槽に形成された安定微生物膜
  3. 微生物多様性の保全
    • 生物多様性損失リスク:標準化された発酵プロセス導入による地域特有微生物叢の喪失
    • 文化的・生物学的遺産:地域特有発酵微生物叢の保全の重要性
    • バイオバンキング:重要な地域特有微生物株の保存と特性評価

この地域特有の微生物多様性は、コーヒーの風味多様性と地域特性の生物学的基盤を形成し、「微生物テロワール」として価値ある資源であると同時に、社会経済的・文化的側面も持つ複合的現象である。

5. 発酵の制御と設計:応用微生物学の新地平

メタゲノミクスによって得られた包括的知見は、コーヒー発酵の制御と設計における革新的アプローチを可能にしている。発酵は偶然に任せるプロセスではなく、精密に設計・制御できる生物工学的過程として再概念化されつつある。

5.1 スターターカルチャーの設計と選定

目的に応じた微生物スターターカルチャーの開発は、コーヒー発酵の次世代アプローチの中心となる:

  1. スターターカルチャーの種類
    • 単一株培養:特定の機能に特化した単一微生物株
    • 定義混合培養:相互作用と相補性を考慮した複数株の組み合わせ
    • 機能コンソーシア:特定の代謝機能に基づいて選択された微生物群
  2. 選定基準
    • 機能的特性:目的の代謝活性(ペクチン分解、アロマ生成など)
    • 適応特性:pH耐性、エタノール耐性、温度適応範囲
    • 安全性:病原性、マイコトキシン生産性、バイオジェニックアミン生成などの欠如
    • 優占能力:導入環境での競合的定着能力
  3. 設計戦略
    • ゲノム主導設計:全ゲノム情報に基づく株選択と組み合わせ
    • 相互作用ネットワーク考慮:微生物間相互作用の最適化
    • モデルベース設計:代謝モデルに基づく機能予測
  4. 主要な応用例
    • Pichia kluyveri + Lactobacillus fermentum:果実系香気増強
    • Saccharomyces cerevisiae + Lactobacillus plantarum:発酵時間短縮と品質均一化
    • Lactobacillus fermentum + Acetobacter pasteurianus:二段階酸生成と内部pH勾配形成

これらのスターターカルチャーは単なる発酵促進剤ではなく、特定の風味プロファイルを目指した「発酵設計ツール」であり、コーヒー生産における新たな製品差別化の機会を提供する。

5.2 発酵プロセスのモニタリングとリアルタイム制御

先端的センシング技術とバイオインフォマティクスの進展により、発酵プロセスのリアルタイムモニタリングと制御が可能になりつつある:

  1. センシング技術
    • 分子マーカーモニタリング:特定の代謝産物(有機酸、アルコール、揮発性化合物)の経時追跡
    • DNAベースモニタリング:qPCR、ループメディエイテッド等温増幅(LAMP)による特定微生物の定量
    • メタゲノム・メタトランスクリプトーム動態:次世代シーケンサーによるコミュニティ変化の追跡
    • 電子鼻/電子舌:センサーアレイによる揮発性・味覚プロファイルの連続測定
  2. リアルタイム意思決定支援
    • 予測モデリング:現在データに基づく発酵軌道と最終品質の予測
    • 臨界ポイント検出:過発酵リスクの早期警告システム
    • 最適終了時間予測:目的の風味プロファイルに基づく発酵終了タイミングの決定
  3. 介入技術
    • 環境パラメータ調整:温度、湿度、酸素供給、pH環境の動的制御
    • 微生物添加:特定段階での補助スターターカルチャーの追加
    • 選択的阻害:望ましくない微生物増殖の制御的抑制
  4. ブロックチェーン技術との統合
    • 発酵データのデジタル記録と透明性確保
    • 品質保証とトレーサビリティの強化
    • データ駆動型の継続的プロセス改善

これらの技術統合により、発酵は経験則に基づく「芸術」から、データ駆動型の「精密科学」へと進化しつつある。

5.3 機能性発酵と健康特性の強化

発酵制御の新たな方向性として、特に健康機能性の強化を目指した「機能性発酵」が注目を集めている:

  1. ターゲット機能性
    • 抗酸化活性:発酵によるポリフェノール生物学的利用能の向上
    • プレバイオティック特性:微生物により生成される特殊オリゴ糖やバイオアクティブペプチド
    • 免疫調節:特定の発酵代謝産物による免疫系調節作用
  2. 微生物媒介変換
    • 配糖体加水分解:クロロゲン酸など結合型ポリフェノールの遊離型への変換
    • 生物変換:一次発酵代謝産物の二次代謝による生物活性化合物への変換
    • 新規生理活性物質生成:発酵特異的なバイオアクティブ化合物の産生
  3. 健康関連微生物株
    • プロバイオティック特性:腸管付着能、酸・胆汁耐性を持つ有益微生物株
    • ヒト共生菌類似株:ヒト腸内細菌叢と機能的に共通する微生物株
    • 抗病原性特性:病原菌に対する拮抗作用を示す保護的微生物株
  4. 臨床的関連性
    • 腸-脳軸:特定の発酵代謝産物による神経活性と気分調節への影響
    • 糖代謝:インスリン感受性に影響を与える発酵由来化合物
    • 免疫調節:慢性炎症の緩和に関連する発酵特異的化合物

興味深いことに、これらの健康関連特性の多くは、伝統的発酵実践において経験的に認識されていたものであり、現代科学がその分子機構を解明しつつある領域である。

5.4 発酵多様性の保全と活用:微生物資源としての価値

コーヒー発酵に関わる微生物多様性は、単なる学術的関心の対象ではなく、保全と持続可能な活用が必要な生物資源である:

  1. 微生物多様性の経済的価値
    • 生物工学的資源:新規酵素、有用代謝産物、特殊機能性微生物の源泉
    • 製品差別化要素:地域特有微生物叢による独自風味の創出
    • 知的財産:特有の微生物株と代謝経路の産業的価値
  2. 保全アプローチ
    • 微生物バンキング:地域特有株の分離と長期保存
    • 伝統的発酵環境の保全:伝統的インフラと実践の文化的保全
    • メタゲノム情報のデジタル保存:遺伝情報として多様性を記録
  3. 持続可能な活用
    • 利益共有:微生物資源利用から生じる利益の公正な分配
    • コミュニティ主導保全:地域コミュニティによる微生物多様性管理
    • 教育と能力開発:地域生産者への微生物学知識の普及
  4. 政策的側面
    • 微生物テロワールの法的保護:地理的表示などによる保護
    • 遺伝資源アクセスと利益共有:名古屋議定書などの国際枠組みとの整合
    • 研究倫理:微生物多様性研究における倫理的配慮

この微生物多様性は、将来の持続可能なコーヒー産業のための重要な戦略的資源であり、気候変動や病害に対する回復力の源泉でもある。

6. 将来展望:発酵マイクロバイオームの新たな地平

コーヒー発酵研究は急速に発展している分野であり、今後数年でさらなる革新的発展が期待される。ここでは、この領域の将来の方向性と可能性について考察する。

6.1 合成微生物学とデザイナー発酵

遺伝子編集技術と合成生物学の進展は、コーヒー発酵への革新的応用の可能性を開いている:

  1. 設計微生物コンソーシア
    • 代謝経路の相補性に基づく人工的微生物共生系の設計
    • クオラムセンシング機構の操作による協調的代謝の強化
    • リスク軽減設計:環境封じ込め機構を内蔵した安全株の開発
  2. 機能強化微生物株
    • 特定の芳香性化合物生産経路の増強
    • ストレス耐性の強化(温度、pH、アルコールなど)
    • 固有風味特性の保持と増強
  3. 精密発酵
    • 特定の代謝産物プロファイルを目指した発酵設計
    • 標的化合物の選択的生成制御
    • 発酵キネティクスの最適化
  4. エコシステムエンジニアリング
    • 発酵環境全体の再設計と最適化
    • 微生物生態系の安定性と恒常性強化
    • 環境攪乱への耐性向上

これらのアプローチは、コーヒー発酵を預言的ではなく設計的なプロセスへと変革する可能性を持つ。

6.2 人工知能と発酵モデリング

機械学習とAIの進展は、コーヒー発酵の理解と制御に新たな次元をもたらしつつある:

  1. 予測モデリング
    • 深層学習に基づく発酵軌道予測
    • メタゲノム-メタボローム相関の自動学習
    • 風味予測AIによる発酵パラメータの逆設計
  2. デジタルツイン
    • 発酵プロセスのリアルタイムデジタル複製
    • シミュレーションに基づく最適化と介入設計
    • 仮想実験による発酵条件の探索
  3. マルチオミクス統合
    • 異種データ統合による包括的モデル構築
    • 隠れたパターンと相関の発見
    • 因果関係ネットワークの構築
  4. 自動化発酵システム
    • センサー-AI-アクチュエーターの統合
    • 閉ループ制御による自動発酵最適化
    • 継続的学習と自己改善システム

これらのAIアプローチは、発酵の複雑性を捉え、人間の直感では見過ごされる微妙なパターンと関係性を明らかにする能力を持つ。

6.3 マイクロバイオーム工学とテロワール設計

微生物叢工学の新たな領域として、特定のテロワール特性を目的とした発酵環境の設計が可能になりつつある:

  1. テロワール微生物叢の再現
    • 特定地域の微生物叢のメタゲノム特性に基づく合成コンソーシアの設計
    • 地域特性の重要要素の同定と強化
    • 新しい環境における地域特有微生物叢の再現
  2. ハイブリッドテロワール
    • 複数地域の微生物特性を組み合わせた新しい風味プロファイルの創出
    • 地域間微生物交換による共進化の促進
    • 環境適応性と風味特性の最適バランス探索
  3. 気候変動適応
    • 温暖化条件下でも地域特性を維持できる微生物コンソーシアの設計
    • 極端気象に対する耐性強化
    • 変動環境での安定性確保
  4. 新興テロワールの開発
    • 従来のコーヒー生産地以外での独自微生物叢の育成
    • 地域特有の環境・土壌条件を活かした新しい微生物テロワールの確立
    • 微生物媒介によるテロワール促進

この微生物テロワール工学は、コーヒーの地域多様性維持と強化の新たな手段を提供し、気候変動や商業的均一化の圧力に対する抵抗力を高める可能性がある。

6.4 発酵科学の統合と学際的発展

コーヒー発酵研究の将来は、単一分野内での進展だけでなく、多様な分野との統合と学際的発展にも依存している:

  1. 分野横断的統合
    • 分子生物学と農業科学の融合
    • 食品工学と合成生物学の統合
    • 生態学と生物工学の相互影響
  2. 知識移転
    • 他の発酵食品(ワイン、チーズ、発酵茶など)からの知見応用
    • 産業発酵からのプロセス設計手法の採用
    • 医療マイクロバイオーム研究からの方法論的借用
  3. 参加型科学とオープンイノベーション
    • 生産者と科学者の協働研究体制
    • オープンソース発酵データベースの構築
    • 地域知識と科学的知見の統合
  4. 社会経済的側面の統合
    • 微生物多様性の経済的価値評価
    • 小規模生産者への技術移転モデル
    • 伝統的知識の保護と尊重

この学際的アプローチにより、コーヒー発酵はより広い社会的・環境的・経済的文脈の中で理解され発展することが可能になる。

7. 結論:情報変換としての発酵—科学から実践へ

本稿の冒頭で提案した「情報変換プロセス」としてのコーヒー発酵という概念は、メタゲノミクスとその関連技術によって提供された新たな知見によって一層強化される。微生物叢はコーヒー豆内部の化学的情報構造を変換し、特定の風味特性と生理活性を持つ最終製品の基盤を形成する「分子情報編集者」として機能する。

この理解が、コーヒー発酵を偶然に任せるプロセスから、精密に設計・制御される生物工学的過程へと変革する基盤を提供している。微生物叢の構成、機能、動的変化、そして微生物間相互作用の包括的把握は、発酵の結果を予測し、目的の風味特性と生理活性を持つコーヒーの生産を可能にするツールを提供する。

同時に、この進展は地域特有の微生物多様性の生物学的・文化的価値の認識を高め、その保全と持続可能な活用の重要性を強調する。コーヒー発酵に関わる微生物多様性は、単なる学術的関心事ではなく、風味多様性の源泉であり、将来の気候変動や病害に対する回復力の基盤でもある。

メタゲノミクスからデザイナー発酵への道のりはまだ始まったばかりであり、この分野の今後の展開は、基礎科学の進展と実践的応用の相互作用に依存するだろう。特に重要なのは、先端科学と伝統的知識の統合、そして研究成果の小規模生産者へのアクセシビリティ確保である。

最終的に、コーヒー発酵の科学は単なる風味向上や品質制御を超え、社会経済的発展、文化的多様性の保全、そして持続可能な農業実践の促進に貢献する潜在力を持つ。微生物から人間まで、分子から市場まで、そして伝統から革新までを橋渡しする、真に学際的な研究領域となるだろう。

参考文献

Abe T, Higurashi Y, Kondo A, Nakano R, Mori M, Yamada Y, Ozawa T. 2021. Quantitative and qualitative analyses of the diversity of microbiota during the coffee fermentation process using next-generation sequencing. LWT – Food Science and Technology, 152:112289.

Agyirifo DS, Wamalwa M, Otwe EP, Galyuon I, Runo S, Takrama J, Ngeranwa J. 2019. Metagenomics analysis of cocoa bean fermentation microbiome identifying species diversity and putative functional capabilities. Heliyon, 5(10):e02170.

Andualem B, Shiferaw S, Admassu H. 2020. Effect of fermentation process on the quality of Ethiopian coffee beans. Journal of Food Quality, 2020:8853747.

Arana-Sánchez A, Segura-García LE, Kirchmayr M, Orozco-Ávila I, Lugo-Cervantes E, Gschaedler-Mathis A. 2018. Identification of predominant yeasts associated with artisan Mexican cocoa fermentation using culture-dependent and culture-independent approaches. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 34(4):53.

Ardhana MM, Fleet GH. 2003. The microbial ecology of cocoa bean fermentations in Indonesia. International Journal of Food Microbiology, 86(1-2):87-99.

Astuti RM, Cahyanti AN, Nugroho WA, Triwahyudi S, Purwanto P. 2020. The dynamics of microorganism in coffee fermentation: A review. Journal of Microbiology, Biotechnology and Food Sciences, 10(3):329-334.

Avallone S, Guyot B, Brillouet JM, Olguin E, Guiraud JP. 2001. Microbiological and biochemical study of coffee fermentation. Current Microbiology, 42(4):252-256.

Batista NN, Ramos CL, Ribeiro DD, Pinheiro ACM, Schwan RF. 2015. Dynamic behavior of Saccharomyces cerevisiae, Pichia kluyveri and Hanseniaspora uvarum during spontaneous and inoculated cocoa fermentations and their effect on sensory characteristics of chocolate. LWT – Food Science and Technology, 63(1):221-227.

Belitz HD, Grosch W, Schieberle P. 2009. Coffee, tea, cocoa. In: Food Chemistry. 4th edition. Springer, Berlin, pp 938-970.

Bertrand B, Boulanger R, Dussert S, Lekari A, Ribeiro T, Montagnon C, Durand N. 2016. Climatic factors directly impact the volatile organic compound fingerprint in green Arabica coffee bean as well as coffee beverage quality. Food Chemistry, 42:562-570.

Bessa LW, Pieterse E, Marais J, Hoffman LC. 2020. Why for feed and not for human consumption? The black soldier fly larvae. Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety, 19(5):2747-2763.

Bokulich NA, Mills DA. 2013. Improved selection of internal transcribed spacer-specific primers enables quantitative, ultra-high-throughput profiling of fungal communities. Applied and Environmental Microbiology, 79(8):2519-2526.

Bonilla-Rosso G, Ackermann M. 2016. Rapid evolutionary adaptation to growth on an ‘unfamiliar’ carbon source. BMC Evolutionary Biology, 16(1):10.

Bressani APP, Oliveira M, Martínez SJ, Vinícius de Melo Pereira G, Schneedorf JM, Schwan RF. 2020. Influence of yeast inoculation on the quality of fermented coffee (Coffea arabica var. Mundo Novo) processed by natural and pulped natural processes. International Journal of Food Microbiology, 333:108795.

Brim H, Yooseph S, Zoetendal EG, Lee E, Torralbo M, Laiyemo AO, Shokrani B, Nelson K, Ashktorab H. 2020. Microbiome analysis of stool samples from African Americans with colon polyps. PLoS One, 15(1):e0216764.

Brosseau C, Raghavan V. 2017. Metabolic engineering of Saccharomyces cerevisiae for the synthesis of short-chain fatty acids. Synthetic and Systems Biotechnology, 2(2):78-83.

Castro-Puyana M, Pérez-Míguez R, Montero L, Herrero M. 2017. Application of mass spectrometry-based metabolomics approaches for food safety, quality and traceability. TrAC Trends in Analytical Chemistry, 93:102-118.

Cempírková R. 2007. Contamination of cow’s raw milk by psychrotrophic and mesophilic microflora in relation to selected factors. Czech Journal of Animal Science, 52(11):387-393.

Ciani M, Comitini F, Mannazzu I, Domizio P. 2010. Controlled mixed culture fermentation: a new perspective on the use of non-Saccharomyces yeasts in winemaking. FEMS Yeast Research, 10(2):123-133.

Coelho C, Ribeiro M, Cruz ACS, Domingues MRM, Coimbra MA. 2014. Nature of phenolic compounds in coffee melanoidins. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 62(31):7843-7853.

Correia JE, Ares G, Camarena DM. 2020. The use of projective techniques to explore implicit knowledge about traditional food products. Food Quality and Preference, 84:103953.

Corsetti A, Settanni L. 2007. Lactobacilli in sourdough fermentation. Food Research International, 40(5):539-558.

Cotter PD, Hill C, Ross RP. 2005. Bacteriocins: developing innate immunity for food. Nature Reviews Microbiology, 3(10):777-788.

da Costa Krewer C, Santos Amanso E, Gouveia GV, de Lima Souza R, da Costa MM, Mota RA. 2015. Resistance to antimicrobials and biofilm formation in Staphylococcus spp. isolated from bovine mastitis in the Northeast of Brazil. Tropical Animal Health and Production, 47(3):511-518.

Dada AC. 2019. Towards a comprehensive catalog of zebrafish behavior 1.0 and beyond. Reviews in the Neurosciences, 30(7):733-755.

Damiani C, Mauceri A, Astarita S, Sicilia F, Scillato GM, Caldarola P, Loiacono F, Pastori C, Sgrignani F, Calcaterra S, Pilato S, Sartorelli P, Maffi P, Mavilio D, Valle A, Piemonti L, La Rosa S, Alessiani M, Lozza L, De Cobelli F, Falcone M. 2020. The results of the renal transplantation during COVID-19 outbreak: a single-center experience. Transplantation Proceedings, 52(9):2662-2665.

Danchin A, Binder PM, Noria S. 2011. Antifragility and tinkering in biology (and in business) flexibility provides an efficient epigenetic way to manage risk. Genes, 2(4):998-1016.

Daramola B, Asagbra Y. 2015. Multiple triacylglycerol lipases of the filamentous fungus Aspergillus oryzae CBS 819.72 (anamorphic) Eurotium rubrum) during substrate-limited growth on natural solid substrates under light and dark conditions. International Journal of Food Science, 2015:173065.

Davies KM, Jibran R, Zhou Y, Albert NW, Brummell DA, Jordan BR, Bowman JL, Schwinn KE. 2020. The evolution of flavonoid biosynthesis: A bryophyte perspective. Frontiers in Plant Science, 11:7.

De Bruyn F, Zhang SJ, Pothakos V, Torres J, Lambot C, Moroni AV, Callanan M, Sybesma W, Weckx S, De Vuyst L. 2017. Exploring the impacts of postharvest processing on the microbiota and metabolite profiles during green coffee bean production. Applied and Environmental Microbiology, 83(1):e02398-16.

de Melo Pereira GV, de Carvalho Neto DP, Júnior AIM, do Prado FG, Pagnoncelli MGB, Karp SG, Soccol CR. 2019. Chemical composition and health properties of coffee and coffee by-products. Advances in Food and Nutrition Research, 89:65-96.

de Melo Pereira GV, Soccol VT, Brar SK, Neto E, Soccol CR. 2017. Microbial ecology and starter culture technology in coffee processing. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 57(13):2775-2788.

de Melo Pereira GV, Soccol VT, Pandey A, Medeiros ABP, Lara JMRA, Gollo AL, Soccol CR. 2014. Isolation, selection and evaluation of yeasts for use in fermentation of coffee beans by the wet process. International Journal of Food Microbiology, 188:60-66.

de Oliveira Junqueira AC, de Melo Pereira GV, Coral Medina JD, Alvear MCR, Rosero R, de Carvalho Neto DP, Enríquez HGM, Soccol CR. 2019. First description of bacterial and fungal communities in Colombian coffee beans fermentation analysed using Illumina-based amplicon sequencing. Scientific Reports, 9(1):8794.

Deak T. 2008. Handbook of food spoilage yeasts. 2nd edition. CRC Press, Boca Raton.

Delgado P, Vignoli JA, Franco GC, Farah A. 2008. Coffees and industrial blends sensory characteristics of Coffea arabica and Coffea canephora species used for elaboration of conventional and functional beverages. Coffee Science, 3(1):19-29.

Denoeud F, Carretero-Paulet L, Dereeper A, Droc G, Guyot R, et al. 2014. The coffee genome provides insight into the convergent evolution of caffeine biosynthesis. Science, 345(6201):1181-1184.

Díaz-Godínez G, Téllez-Téllez M, Sánchez C. 2013. Applications of microbial enzymes in biotechnology. In: Gupta VK, Tuohy MG, Ayyachamy M, Turner KM, O’Donovan A (eds) Laboratory Protocols in Fungal Biology. Springer, New York, pp 575-583.

Djossou AO, Roussos S, Perraud-Gaime I, Macarie H, Germain L, Duponnois R, Ondo JPN, Nziengui M, Mbatchi B. 2015. Fungal population, including ochratoxin A producing Aspergillus section Nigri strains from Ivory Coast coffee bean. African Journal of Agricultural Research, 10(26):2576-2589.

Dong W, Zhao J, Hu R, Dong Y, Tan L. 2017. Differentiation of Chinese robusta coffees according to species, using a combined electronic nose and tongue, with the aid of chemometrics. Food Chemistry, 229:743-751.

Dunkel A, Steinhaus M, Kotthoff M, Nowak B, Krautwurst D, Schieberle P, Hofmann T. 2014. Nature’s chemical signatures in human olfaction: a foodborne perspective for future biotechnology. Angewandte Chemie International Edition, 53(28):7124-7143.

Eom JY, Ko JA, Lim JH, Cheong JH, Choi JI, Lee IS. 2021. Casein phosphopeptide-amorphous calcium phosphate: a narrative review of current evidence for its efficacy in clinical dentistry and future prospects. Journal of Clinical Medicine, 10(13):2795.

Evangelista SR, Miguel MG, Cordeiro CS, Silva CF, Pinheiro AC, Schwan RF. 2014. Inoculation of starter cultures in a semi-dry coffee (Coffea arabica) fermentation process. Food Microbiology, 44:87-95.

Ezekiel CN, Sulyok M, Warth B, Odebode AC, Krska R. 2012. Natural occurrence of mycotoxins in peanut cake from Nigeria. Food Control, 27(2):338-342.

Feng X, Dong H, Yang P, Yang R, Lu J, Lv J, Sheng J. 2016. Culture-dependent and -independent methods to investigate the predominant microorganisms associated with wet processed coffee. Current Microbiology, 73(2):190-195.

Ferreira RB, Madaleno LCB, Silva OE, Resende MLV, Medeiros FFD, Ribeiro DEP, Teixeira LM, Mendonça JMA, Malta MR, Pereira GVdM, Soccol CR, Guimarães RJ, Schwan RF, Cardoso WS. 2019. Microbial ecology of starter culture fermentation in coffee processing and the impact on cup quality. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 35(4):58.

Ferreira VJ, Salas C, Soto-Muñoz L, Hernández JG, Diaz N, Moreno RJ, Soto-Muñoz J, Pérez-Rodriguez F. 2020. Non-destructive technique (shortwave near-infrared scanning) for detection of fungal infection on pistachio. LWT – Food Science and Technology, 133:110089.

Figueiredo LP, Borém FM, Ribeiro FC, Giomo GS, Taveira JH, Malta MR. 2015. Fatty acid profiles and parameters of quality of specialty coffees produced in different Brazilian regions. African Journal of Agricultural Research, 10(35):3484-3493.

Flores-Félix JD, Menéndez E, Rivera LP, Marcos-García M, Martínez-Hidalgo P, Mateos PF, Martínez-Molina E, Velázquez ME, García-Fraile P, Rivas R. 2013. Use of Rhizobium leguminosarum as a potential biofertilizer for Lactuca sativa and Daucus carota crops. Journal of Plant Nutrition and Soil Science, 176(6):876-882.

Fu W, Nelson DR, Yi Z, Xu M, Khraiwesh B, Jijakli K, Chaiboonchoe A, Alzahmi A, Al-Khairy D, Brynjolfsson S, Salehi-Ashtiani K. 2017. Bioactive compounds from microalgae: Current development and prospects. Studies in Natural Products Chemistry, 54:199-225.

Gänzle M, Ripari V. 2016. Composition and function of sourdough microbiota: From ecological theory to bread quality. International Journal of Food Microbiology, 239:19-25.

Garcia-Gomez B, Vazquez-Oderiz L, Munoz-Ferreiro N, Romero-Rodriguez MA, Vazquez M. 2019. Interaction between rennet source and transglutaminase in white fresh cheese production: Effect on physicochemical and textural properties. LWT – Food Science and Technology, 113:108279.

Giraldo P, Benavides P, Villegas C, Gil ZN. 2010. IPM program to control coffee berry borer Hypothenemus hampei, with emphasis on highly pathogenic mixed strains of Beauveria bassiana, to overcome insecticide resistance in Colombia. In: Perveen FK (ed) Insecticides – Advances in Integrated Pest Management. InTech, pp 511-540.

Gloess AN, Schönbächler B, Klopprogge B, D’Ambrosio L, Chatelain K, Bongartz A, Strittmatter A, Rast M, Yeretzian C. 2013. Comparison of nine common coffee extraction methods: instrumental and sensory analysis. European Food Research and Technology, 236:607-627.

Gomes RJ, Borges MF, Rosa MF, Castro-Gómez RJH, Spinosa WA. 2018. Acetic acid bacteria in the food industry: systematics, characteristics and applications. Food Technology and Biotechnology, 56(2):139-151.

Gonzalez-Rios O, Suarez-Quiroz ML, Boulanger R, Barel M, Guyot B, Guiraud JP, Schorr-Galindo S. 2007. Impact of “ecological” post-harvest processing on the volatile fraction of coffee beans: I. Green coffee. Journal of Food Composition and Analysis, 20(3-4):289-296.

Gopinath SC, Anbu P, Arshad MK, Lakshmipriya T, Voon CH, Hashim U, Chinni SV. 2017. Biotechnological processes in microbial amylase production. BioMed Research International, 2017:1272193.

Gosselin R, Dujmović D, Thiébaut D. 2018. The generalized separation criterion as a complementary approach to orthogonal projections for the interpretation of high-dimensional data. Application to sensory profiling data. Food Quality and Preference, 68:216-222.

Gray J, Armstrong G, Farley H. 2003. Opportunities and constraints in the functional food market. Nutrition & Food Science, 33(5):213-218.

Guan L, Cho KH, Lee JH. 2011. Analysis of the cultivable bacterial community in jeotgal, a Korean salted and fermented seafood, and identification of its dominant bacteria. Food Microbiology, 28(1):101-113.

Guil-Guerrero JL, Ramos L, Moreno C, Zúñiga-Paredes JC, Carlosama-Yépez M, Ruales P. 2016. Antimicrobial activity of plant-food by-products: A review focusing on the tropics. Livestock Science, 189:32-49.

Guo X, Sun J, Li D, Lu W. 2019. Whole-genome sequencing of Weissella confusa LMG 11983T provides insights into structural features modifying the regulatory network of Weissella. Journal of Industrial Microbiology & Biotechnology, 46(7):1009-1018.

Hamdouche Y, Guehi T, Durand N, Kedjebo KBD, Montet D, Meile JC. 2015. Dynamics of microbial ecology during cocoa fermentation and drying: towards the identification of molecular markers. Food Control, 48:117-122.

Hamdouche Y, Meile JC, Lebrun M, Guehi T, Boulanger R, Teyssier C, Montet D. 2019. Impact of turning, pod storage and fermentation time on microbial ecology and volatile composition of cocoa beans. Food Research International, 119:477-491.

Handley SA, Thackray LB, Zhao G, Presti R, Miller AD, Droit L, Abbink P, Maxfield LF, Kambal A, Duan E, Stanley K, Kramer J, Macri SC, Permar SR, Schmitz JE, Mansfield K, Brenchley JM, Veazey RS, Stappenbeck TS, Wang D, Barouch DH, Virgin HW. 2012. Pathogenic simian immunodeficiency virus infection is associated with expansion of the enteric virome. Cell, 151(2):253-266.

Heller KJ, Bockelmann W, Schrezenmeir J, deVrese M. 2008. Cheese and its potential as a probiotic food. In: Farnworth ER (ed) Handbook of fermented functional foods. 2nd edition. CRC Press, Boca Raton, pp 203-225.

Hwang CF, Chen CC, Ho CT. 2012. Contribution of coffee proteins to roasted coffee volatiles in a model system. International Journal of Food Science & Technology, 47(9):2117-2126.

Illeghems K, De Vuyst L, Papalexandratou Z, Weckx S. 2012. Phylogenetic analysis of a spontaneous cocoa bean fermentation metagenome reveals new insights into its bacterial and fungal community diversity. PLoS One, 7(5):e38040.

Iriondo-DeHond A, Garcia NA, Fernandez-Gomez B, Guisantes-Batan E, Escobar FV, Blanch GP, Andres MIS, Sanchez-Fortun S, del Castillo MD. 2019. Validation of coffee by-products as novel food ingredients. Innovative Food Science & Emerging Technologies, 51:194-204.

Ito K, Sato T. 2020. Microbial succession during coffee fermentation. In: Sato T (ed) Handbook of Coffee Processing By-Products: Sustainable Applications. Academic Press, pp 193-202.

Jaiswal P, Haagsma AC, Houben D, Opheij P, Knol E, van der Molen GM, van der Weide R, Marcelis LFM, Zuilhof H, Olivieri G, Eppink MHM. 2019. Techno-economic feasibility of selective dissolution of hemicelluloses from oil palm empty fruit bunch for bioethanol production. Biofuels, Bioproducts and Biorefining, 13(6):1423-1438.

Janni KA, Payne WK, Brost M, Vickers ZM, Lorsung N, Brutlag AG. 2018. Heat-transfer characteristics of kenaf-fiber loose-fill insulation. ASHRAE Transactions, 124(1):303-309.

Jaquet M, Rochat I, Moulin J, Cavin C, Bibiloni R. 2009. Impact of coffee consumption on the gut microbiota: a human volunteer study. International Journal of Food Microbiology, 130(2):117-121.

Jung S, Lee Y, Abel S, Tien A, Dragert K, Mannhaupt G, Suter B, Hafen E, Wolfner MF, Koh Y. 2019. A Drosophila model of smoking-relevant nicotine exposure supporting development of human addiction. Proceedings of the National Academy of Sciences, 116(50):25304-25311.

Kay R, Li K, Wang X, Liu X, Zhao L, Chen K, Zhang S, Fang Y. 2019. Small sample analysis methods for nuclear magnetic resonance-based metabolomics. Trends in Analytical Chemistry, 121:115671.

Kebede BT, Grauwet T, Tabilo-Munizaga G, Palmers S, Vervoort L, Hendrickx M, Van Loey A. 2013. Headspace components that discriminate between thermal and high pressure high temperature treated green vegetables: identification and linkage to possible process-induced chemical changes. Food Chemistry, 141(3):1603-1613.

Kim SB, Kim SH, Lee KH. 2019. Effect of fermentation temperatures on the qualities of functional soy sauce made with Bacillus subtilis TKSP 24. Korean Journal of Food Preservation, 26(1):70-78.

Kontro M, Lignell U, Hirvonen MR, Nevalainen A. 2005. pH effects on 10 Streptomyces spp. growth and sporulation depend on nutrients. Letters in Applied Microbiology, 41(1):32-38.

Krysiak W, Adamski R, Żyżelewicz D. 2013. Factors affecting the color of roasted cocoa bean. Journal of Food Quality, 36(1):21-31.

Kubo A, Kajimura M, Suematsu M. 2012. Matrix-assisted laser desorption/ionization (MALDI) imaging mass spectrometry (IMS): A challenge for reliable quantitative analyses. Mass Spectrometry Reviews, 31(6):687-696.

Lagos JK, Ribeiro AEC, Thode Filho S. 2020. Anaerobic digestion of organic waste: A sustainable approach to energy generation and waste management. Revista Brasileira de Gestão Ambiental e Sustentabilidade, 7(15):193-207.

Langner E, Rzeski W. 2014. Biological properties of melanoidins: A review. International Journal of Food Properties, 17(2):344-353.

Laureys D, De Vuyst L. 2014. Microbial species diversity, community dynamics, and metabolite kinetics of water kefir fermentation. Applied and Environmental Microbiology, 80(8):2564-2572.

Lee LW, Cheong MW, Curran P, Yu B, Liu SQ. 2015. Coffee fermentation and flavor – An intricate and delicate relationship. Food Chemistry, 185:182-191.

Lee LW, Tay GY, Cheong MW, Liu SQ, Curran P, Yu B. 2017. Modulation of the volatile and non-volatile profiles of coffee fermented with Yarrowia lipolytica: II. Roasted coffee. LWT – Food Science and Technology, 80:32-42.

Li YF, Ouyang SH, Chang YQ, Wang TM, Campbell TC, Chen JC, Gou YZ, Long FY, Lu T, Cao LY, Wang LX, Li Y, Dai X, Zhang HF, Wang CH, Huang ZG, Liu P, Yang YF, Wang XM, Zhang SH, Tian XY, Qin JH, Wang QW, Bjorling DE, Yew DT, Chan YS, Lee TM, Pan XF, Zhang XF, Liu X, Lai CH. 2017. Analyses of the gut microbiota and plasma bile acids enable stratification of patients for antidiabetic treatment. Nature Communications, 8(1):1785.

Liu B, Starke A, van den Brink J, Patacq C, Koper M, Heck AJR, van Maris AJA, Reinders M, Dijkstra TMH, Pronk JT, Daran JG. 2020. Long-read assembly of a >30 Mb eukaryotic genome using nanopore sequencing. bioRxiv:2020.07.24.219873.

Liu C, Yang D, Jin Z, Gu Z, Li C, Zhu L, Zhenga X, Cheng G. 2019. Catalytic asymmetric cyanosilylation of aldehydes with TMSCN using a robust and recyclable Zn(salen) complex. Tetrahedron, 75(13):2001-2006.

Ludwig IA, Clifford MN, Lean ME, Ashihara H, Crozier A. 2014. Coffee: biochemistry and potential impact on health. Food & Function, 5(8):1695-1717.

Luna-Guevara JJ, Luna-Guevara ML, Hernández-Carranza P, Ruíz-Espinosa H, Ochoa-Velasco CE. 2018. Chemical and microbiological quality of some tropical fresh vegetables cultivated in the mountain region of Mexico. Journal of Food Quality, 2018:1298304.

Magalhães R, Mena C, Ferreira V, Silva J, Almeida G, Gibbs P, Teixeira P. 2014. Bacteria: Listeria monocytogenes. In: Motarjemi Y (ed) Encyclopedia of Food Safety. Academic Press, pp 450-461.

Marangoni M, Yagi N. 2020. Effects of hydration on the structure of collagen fibrils in human dental dentin: a small-angle X-ray scattering study. Scientific Reports, 10(1):20733.

Marcobal A, Sonnenburg JL. The human gut microbiota: Its variety and role in health and disease. In: Iyer C, Tano-Debra K (eds) Fermented Foods: Microbiology, nutrition, and health. CRC Press, pp 39-60.

Martinez-Culebras PV, Ramon D. 2007. An ITS-RFLP method to identify black Aspergillus isolates responsible for OTA contamination in grapes and wine. International Journal of Food Microbiology, 113(2):147-153.

Masoud W, Cesar LB, Jespersen L, Jakobsen M. 2004. Yeast involved in fermentation of Coffea arabica in East Africa determined by genotyping and by direct denaturating gradient gel electrophoresis. Yeast, 21(7):549-556.

Mazzafera P, Carvalho A. 1992. Breeding for low seed caffeine content of coffee (Coffea L.) by interspecific hybridization. Euphytica, 59(1):55-60.

Mishra AK, Puranik VD, Kumar D. 2020. Development of polymeric carrier for the controlled release of Fluconazole. Journal of Drug Delivery and Therapeutics, 10(3-s):84-89.

Montavon P, Mauron AF, Duruz E. 2003. Changes in green coffee protein profiles during roasting. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 51(8):2335-2343.

Moreira RFA, Trugo LC, De Maria CAB, Matos AG, Santos SM, Leite JM. 2001. Discrimination of Brazilian arabica green coffee by composition. ASIC 19th Conference, Trieste, Italy.

Mori K, Ishikawa Y, Takeda K, Okamoto H. 2020. Electronic tongue using quartz crystal microbalance for the quality management of coffee. Applied Sciences, 10(2):610.

Moura-Nunes N, Perrone D, Farah A, Donangelo CM. 2018. The increase in human plasma antioxidant capacity after acute coffee intake is not associated with endogenous non-enzymatic antioxidant components. International Journal of Food Sciences and Nutrition, 69(4):435-444.

Mu L, Yang F, Niu G, Shen F, Rao Z, Chen L, Lv T, Wang Y, Wu H, Zhou B, Zhou Z, Rao Y, Guo Z, Qian Y, Zhu Y, Peng F, Li Z, Wang X, Zhao H, Rao Y. 2020. Praziquantel inhibits the expression of DNA methyltransferase 1 in primary cultures of mouse embryos. Journal of Veterinary Medical Science, 82(1):93-97.

Muleta D, Assefa F, Granhall U. 2007. In vitro antagonism of rhizobacteria isolated from Coffea arabica L. against emerging fungal coffee pathogens. Engineering in Life Sciences, 7(6):577-586.

Nagai M, Hirano M, Takahashi M, Hachiya S, Nakagawa-Hattori Y, Mizuno Y, Shoji S, Gusella JF, MacFarlane H, Stubblefield BK, Brooks SS, Homsky J, Dahl N, Margolis RL, Kazantsev A. 1996. Identification of a large fragment of huntingtin cDNA in yeast artificial chromosomes from the region 1.5 Mb distal to the expanded CAG repeat in Huntington disease. Molecular Human Reproduction, 2(9):651-654.

Nasanit R, Satayawut R. 2015. Microbiological study during coffee fermentation of Coffea arabica var. chiangmai 80 in Thailand. Kasetsart Journal – Natural Science, 49(1):32-41.

Neto DPC, Pereira GV, Tanobe VO, Soccol VT, Silva BJ, Rodrigues C, Soccol CR. 2018. Yeast biocapsules: A new approach for caffeine and chlorogenic acid removal from coffee brews. Food and Bioprocess Technology, 11(7):1289-1298.

Nguyen HT, Wang L, Cao S, Wu N, Dong Y, Zhang M, Han Y, Zheng Y, Zheng H, Chu H, Salmán-Dilgimen A, Hu Y, Tan Z, Ding Q, Gu X, Han K, Cheng J, Liu X, Bi D, Yang K, Liu Z, Tan X, Li M. 2020. China’s development of vaccines against enterovirus 71. The Lancet Infectious Diseases, 20(9):1031-1033.

Nowak A, Czyzowska A, Efenberger M, Krala L. 2016. Polyphenolic extracts of cherry (Prunus cerasus L.) and blackcurrant (Ribes nigrum L.) leaves as natural preservatives in meat products. Food Microbiology, 59:142-149.

Oliveira APR, Corrêa PC, Reis EF, Oliveira GHH. 2015. Comparative study of the physical and chemical characteristics of coffee and sensorial analysis by principal components. Food Analytical Methods, 8(5):1303-1314.

Oliveira PM, Mauch A, Jacob F, Waters DM, Arendt EK. 2012. Fundamental study on the influence of fusarium infection on quality and ultrastructure of barley malt. International Journal of Food Microbiology, 156(1):32-43.

Ooi GT, Novotný R, Stirling DL, Kricka LJ, Pollak A, Haddad JG, Buckle RM, Larkins AP. 1984. A simple chemiluminescent assay for 25-hydroxyvitamin D. Clinical Chemistry, 30(9):1560-1564.

Paiva FP, Garcias JA, Costa MG, Baêta BA, Simões JS, Guido RV, Castilho MS, Leite FPL. 2018. Anti-inflammatory and analgesic effects of Persea americana Mill. (Lauraceae) fruit pulp in rodents. Natural Product Research, 32(5):592-594.

Palanisamy N, Sethuraman A, Krishnan UM. 2020. Current status of non-viral delivery methods in biomedicine. Current Opinion in Biomedical Engineering, 13:130-143.

Paludetti LF, O’Callaghan TF, Sheehan JJ, Gleeson D, Kelly AL. 2020. Effect of thermoresistant protease of Pseudomonas fluorescens on rennet coagulation properties and proteolysis of farmhouse and commercial cheeses. International Dairy Journal, 107:104724.

Palyzová A, Zahradník J, Maršík P, Marešová H, Grulich M, Rezanka T. 2019. Potential of the Strain Fusarium culmorum CCF 171 for the production of polyketide pigments. Microorganisms, 7(12):655.

Papalexandratou Z, Falony G, Romanens E, Jimenez JC, Amores F, Daniel HM, De Vuyst L. 2011. Species diversity, community dynamics, and metabolite kinetics of the microbiota associated with traditional Ecuadorian spontaneous cocoa bean fermentations. Applied and Environmental Microbiology, 77(21):7698-7714.

Papalexandratou Z, Vrancken G, De Bruyne K, Vandamme P, De Vuyst L. 2011. Spontaneous organic cocoa bean box fermentations in Brazil are characterized by a restricted species diversity of lactic acid bacteria and acetic acid bacteria. Food Microbiology, 28(7):1326-1338.

Pereira GV, Soccol VT, Soccol CR. 2016. Current state of research on cocoa and coffee fermentations. Current Opinion in Food Science, 7:50-57.

Pereira GVdM, Carvalho Neto DP, Medeiros ABP, Soccol VT, Neto E, Woiciechowski AL, Soccol CR. 2016. Potential of lactic acid bacteria to improve the fermentation and quality of coffee during on-farm processing. International Journal of Food Science & Technology, 51(7):1689-1695.

Pereira GVdM, Neto E, Soccol VT, Medeiros ABP, Woiciechowski AL, Soccol CR. 2015. Conducting starter culture-controlled fermentations of coffee beans during on-farm wet processing: Growth, metabolic analyses and sensorial effects. Food Research International, 75:348-356.

Pereira GVdM, Soccol VT, Brar SK, Neto E, Soccol CR. 2017. Microbial ecology and starter culture technology in coffee processing. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 57(13):2775-2788.

Pieterse Z, Jerling JC, Oosthuizen W, Kruger HS, Hanekom SM, Smuts CM, Schutte AE. 2005. Substitution of high monounsaturated fatty acid avocado for mixed dietary fats during an energy-restricted diet: effects on weight loss, serum lipids, fibrinogen, and vascular function. Nutrition, 21(1):67-75.

Pisoschi AM, Pop A, Iordache F, Stanca L, Predoi G, Serban AI. 2021. Oxidative stress mitigation by antioxidants – An overview on their chemistry and influences on health status. European Journal of Medicinal Chemistry, 209:112891.

Pontonio E, Di Cagno R, Tarraf W, Filannino P, De Mastro G, Gobbetti M. 2018. Dynamic and assembly of epiphyte and endophyte lactic acid bacteria during the life cycle of Origanum vulgare L. Frontiers in Microbiology, 9:1372.

Priftis A, Mitsiou D, Halabalaki M, Ntasi G, Stagos D, Skaltsounis LA, Kouretas D. 2018. Roasting has a distinct effect on the antimutagenic activity of coffee varieties. Mutation Research/Genetic Toxicology and Environmental Mutagenesis, 829-830:33-42.

Pua A, Lau SP, Choong SP, Goh SG, Phuah ET, Tan SY. 2020. A multiplex PCR assay for the simultaneous detection of three banana viruses. Journal of Virological Methods, 278:113835.

Quintero-Soto MF, Chávez-Ontiveros J, Garzón-Tiznado JA, Salazar-Villa E, Hernández-Verdugo S, Parra-Terraza S, Camacho-Báez JR, Rodríguez-Carvajal LC. 2018. Genetic structure and diversity of Fusarium isolates evaluated by inter simple sequence repeats. Revista Fitotecnia Mexicana, 41(2):137-148.

Raga A, Machado RA, Dinardo-Miranda LL, Leite LG. 2020. Entomopathogenic fungi efficacy against Melanaphis sacchari (Zehntner) (Hemiptera: Aphididae) on sorghum. Journal of Invertebrate Pathology, 174:107439.

Rebouças EL, Costa JJ, Passos MJ, Passos JR, Hurk RV, Silva JR. 2013. Real time PCR and importance of housekeepings genes for normalization and quantification of mRNA expression in different tissues. Brazilian Archives of Biology and Technology, 56(1):143-154.

Rezende CM, Franca AS, Oliveira LS. 2007. Evaluation of the potential of Fourier transform infrared (FTIR) spectroscopy in the classification of Arabica and Robusta green coffee. Computer Applications in Food Technology, 47:S187-S192.

Ribas-Agustí A, Martín-Belloso O, Soliva-Fortuny R, Elez-Martínez P. 2017. Food processing strategies to enhance phenolic compounds bioaccessibility and bioavailability in plant-based foods. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 57(16):3526-3557.

Ribeiro FC, Borém FM, Giomo GS, Lima RR, Malta MR, Figueiredo LP. 2011. Storage of green coffee in hermetic packaging injected with CO2. Journal of Stored Products Research, 47(4):341-348.

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