第5部:オメガ脂肪酸由来脂質メディエーターとホルモン調節-新規生理活性物質の発見と機能解明
- I. スペシャライズドプロレゾルビングメディエーター(SPM)の発見と分類:炎症収束の分子機構
- II. SPM受容体と細胞内シグナル伝達:G蛋白質共役型受容体を介した作用機序
- III. エンドカンナビノイド系:オメガ脂肪酸由来の神経活性脂質と内分泌調節
- IV. 電気陰性脂質メディエーター:オキシステロール、4-HNE、15d-PGJ2の転写調節作用
- V. SPMによるミトコンドリア機能調節:エネルギー代謝とステロイド合成の連関
- VI. 小胞体ストレス応答の調節:UPR経路とステロイドホルモン合成酵素の関連
- VII. 脂質メディエーターと循環リズム:メラトニン-テストステロン軸の時間的調節
- VIII. マイクロバイオーム-脂質メディエーター軸:腸内細菌による代謝変換とホルモン調節
- IX. 結論:オメガ脂肪酸由来脂質メディエーターの多様性と特異性
- 参考文献
I. スペシャライズドプロレゾルビングメディエーター(SPM)の発見と分類:炎症収束の分子機構
炎症過程は単に「始まり」と「終わり」を持つ単純な事象ではなく、精緻に制御された一連のステップから成る動的プロセスである。従来、炎症の収束は単に炎症促進性メディエーターの消失による受動的な現象と考えられてきたが、21世紀初頭からの研究は、炎症収束が独自の生理活性物質によって能動的に制御されるプロセスであることを明らかにした。このパラダイムシフトを導いたのが、「スペシャライズドプロレゾルビングメディエーター(SPM)」と総称される一連の脂質分子の発見である。
SPMの発見は、ハーバード大学のCharles Serhan博士らのグループによる革新的な「炎症収束相」の体系的研究から始まった。彼らは2000年代初頭、マウスの無菌性炎症モデルにおいて時系列サンプリングを行い、炎症の後期に特異的に出現する脂質メディエーターを網羅的に解析した。この「リピドミクス」アプローチにより、オメガ-3脂肪酸由来の新規生理活性物質群が同定された(Serhan et al., 2002)。これらのSPMは、その前駆体と分子構造に基づいて複数のファミリーに分類される。
EPAから派生するレゾルビンEシリーズ(RvE1-4)は、最初に同定されたSPMファミリーである。RvE1は血管内皮細胞でアセチル化COX-2または細胞質P450によってEPAから18R-ヒドロキシEPAが生成され、続いて好中球5-リポキシゲナーゼ(5-LOX)による変換で産生される。RvE1の立体構造は5S,12R,18R-トリヒドロキシ-6Z,8E,10E,14Z,16E-エイコサペンタエン酸であり、この精密な立体配置が受容体結合と生物活性に不可欠である(Arita et al., 2005)。
DHAから派生するレゾルビンDシリーズ(RvD1-6)は、より多様な分子群を形成している。RvD1は、15-リポキシゲナーゼ(15-LOX)によってDHAから17S-ヒドロキシDHAが生成され、続いて5-LOXによる変換で産生される。また、アスピリンによってアセチル化されたCOX-2はDHAを17R-ヒドロキシDHAに変換し、これが5-LOXによってアスピリントリガー型レゾルビン(AT-RvD1-4)へと代謝される(Serhan & Levy, 2018)。この「アスピリントリガー」経路の発見は、アスピリンの抗炎症作用の新たなメカニズムを示唆するものであった。
DHAから派生するもう一つの重要なSPMファミリーがプロテクチンである。プロテクチンD1(PD1、神経系ではNPD1とも呼ばれる)は、15-LOXによるDHAの変換で生成する16,17-エポキシドを経て産生される。この分子は強力な神経保護作用を持ち、アルツハイマー病やストロークのような神経変性疾患モデルにおいて保護効果を示すことから、「プロテクチン」と命名された(Bazan, 2012)。PD1は中枢神経系のみならず、肺、腎臓などの臓器でも産生され、炎症性疾患に対する保護作用を示す。
マレシン(MaR1-2)は、マクロファージで産生されるDHA由来のSPMファミリーである。マクロファージの12/15-LOXによってDHAから14S-ヒドロキシDHAが生成され、続いて13,14-エポキシドを経てMaR1が産生される。「マレシン」という名称は「マクロファージ由来の炎症収束因子(macrophage mediator in resolving inflammation)」に由来する。MaR1は組織修復と再生を促進する強力な活性を持ち、特にマクロファージの貪食能(エフェロサイトーシス)を増強する(Dalli et al., 2017)。
最近の研究では、n-3 DPAなどの他のオメガ-3脂肪酸からも新たなSPMが産生されることが明らかになっている。特に、n-3 DPA由来の13-シリーズレゾルビン(RvT1-4)は、血管内皮細胞とホスファチジルコリンの相互作用により産生され、抗炎症作用と感染防御能の増強作用を示す(Dalli et al., 2016)。
SPMの生物活性は極めて高く、ナノモル(nM)〜ピコモル(pM)という低濃度で効果を発揮する。その主な作用としては、好中球浸潤の制限、マクロファージによる死細胞・細菌の貪食の促進、炎症性サイトカイン産生の抑制、組織修復と再生の促進などが挙げられる。特に、SPMは単に炎症を抑制するのではなく、適切な炎症収束プログラムを促進することで組織恒常性の回復に寄与する(Levy et al., 2012)。
SPMの発見は、炎症を単なる「悪玉」ではなく、適切に開始・進行・収束することで組織恒常性維持に寄与する必須プロセスとして再評価する契機となった。また、この「炎症収束不全」という概念は、慢性炎症性疾患の病態理解と新たな治療戦略開発において重要な視点を提供している。
II. SPM受容体と細胞内シグナル伝達:G蛋白質共役型受容体を介した作用機序
SPMの多様な生理作用は、特異的な受容体を介した精緻な細胞内シグナル伝達によって発揮される。これらの受容体の同定と特性解明は、SPMの作用機序理解において重要なブレークスルーとなった。SPM受容体の多くはG蛋白質共役型受容体(GPCR)であり、それぞれが独自のシグナル伝達経路を活性化する。では、主要なSPM受容体とそのシグナル伝達経路の特性を詳細に検討してみよう。
RvE1の受容体として最初に同定されたのは、ChemR23(CMKLR1)である。この受容体は当初、ケマリン(chemerin)というペプチドのリガンドとして知られていたが、Arita et al.(2007)はRvE1がChemR23に高い親和性(Kd≈11.3nM)で結合することを発見した。ChemR23は樹状細胞、マクロファージ、好中球などの免疫細胞に加え、脳、腎臓、副腎などの多様な組織にも発現している。RvE1-ChemR23結合は、Gαi/oタンパク質を介してアデニル酸シクラーゼを阻害し、cAMP産生を抑制する。さらに、ERK/MAPK経路の活性化、リン脂質キナーゼPI3Kの活性化、NF-κBの核内移行阻害などの下流シグナルが誘導される。
興味深いことに、RvE1は好中球でBLT1(LTB4受容体1)に拮抗的に結合することも報告されている。この二重作用により、RvE1はチェマリン依存性マクロファージ活性化を促進する一方で、LTB4依存性の好中球活性化を抑制するという複合的な効果を示す。この「デュアルアゴニスト/アンタゴニスト」作用は、炎症収束過程における精密な細胞応答調節の一例と言えるだろう(Arita et al., 2007)。
RvD1の主要受容体はGPR32(DRV1)とALX/FPR2である。ALX/FPR2は当初、リポキシンA4の受容体として同定されたが、後にRvD1の受容体としても機能することが明らかになった。Krishnamoorthy et al.(2010)の研究によれば、RvD1はGPR32に対してKd≈8.8nMという高い親和性を示し、ALX/FPR2に対してもKd≈0.17nMという極めて高い親和性で結合する。これらの受容体は単球、マクロファージ、樹状細胞などの免疫細胞に発現し、RvD1結合によりβ-アレスチンを介したシグナル伝達を活性化する。
β-アレスチンを介したシグナル伝達は、SPM作用の重要な経路である。RvD1-GPR32/ALX結合はβ-アレスチン2のリクルートを促進し、これがMAPKのスキャフォールディングタンパク質として機能することで特異的なシグナル伝達パターンを形成する。さらに、β-アレスチン2はNF-κB p65サブユニットと直接相互作用し、その転写活性を抑制することも報告されている(Sun et al., 2017)。
MaR1受容体として、最近LGR6(Leucine-rich repeat-containing G protein-coupled receptor 6)が同定された。Chiang et al.(2019)の研究によれば、MaR1はLGR6に特異的に結合し(Kd≈0.14nM)、cAMPシグナル伝達の調節を介して、マクロファージの貪食能増強や組織修復促進などの作用を誘導する。LGR6は幹細胞マーカーとしても知られており、MaR1のLGR6を介した作用が組織再生・修復における役割を担っている可能性が示唆されている。
PD1の特異的受容体は未だ同定されていないが、GPR37が候補受容体として報告されている。Bang et al.(2018)の研究によれば、GPR37はPD1と特異的に結合し、神経保護作用を媒介する可能性がある。GPR37はドパミン作動性ニューロンに高発現していることから、PD1の神経保護作用との関連が注目されている。
SPM受容体の特徴的な側面の一つは、リガンド結合に対する立体特異性である。例えば、RvD1の17S-ヒドロキシ体と17R-ヒドロキシ体(AT-RvD1)は同じ受容体に結合するが、その親和性と活性化パターンに微妙な差異がある。この立体特異性は、SPMの精密な生理作用の基盤となっている。
最近の研究では、SPM受容体のアロステリック調節機構も注目されている。Qin et al.(2021)の研究では、GPR32がコレステロールと相互作用し、その結合特性を変化させることが報告された。膜脂質環境の変化がSPM受容体機能に影響を与える可能性は、栄養状態とSPM応答性の関連を考える上で重要な視点となるだろう。
SPMシグナル伝達の特徴は、その「触媒的」性質にある。極微量のSPMが特異的受容体に結合することで、細胞応答の質的変化を誘導し、炎症収束プログラムの一連のステップを促進する。この効率的なシグナル増幅メカニズムは、SPMが低濃度で強力な生理作用を示す分子基盤となっている。
III. エンドカンナビノイド系:オメガ脂肪酸由来の神経活性脂質と内分泌調節
オメガ脂肪酸から派生する生理活性脂質の中でも、特に神経系と内分泌系の機能調節において重要な役割を果たすのがエンドカンナビノイド系である。エンドカンナビノイドは内因性のカンナビノイド受容体リガンドであり、神経伝達調節、代謝調節、生殖機能など多様な生理プロセスに関与している。この内因性カンナビノイド系の発見と特性解明は、脂質メディエーターの多様性と特異性を理解する上で重要な洞察を提供している。
エンドカンナビノイド系の発見は、大麻の主要活性成分であるΔ9-THC(テトラヒドロカンナビノール)の作用機序を探る研究から始まった。1990年代、マウス脳からカンナビノイド受容体CB1が、続いて免疫細胞からCB2受容体が同定された。この発見は当然「内因性のリガンド」が存在するはずだという推測を導き、1992年にDevane et al.によって最初のエンドカンナビノイドであるアナンダミド(N-アラキドノイルエタノールアミン、AEA)が豚脳から単離された。その後、2-アラキドノイルグリセロール(2-AG)を含む複数のエンドカンナビノイドが同定されている(Piomelli, 2003)。
アナンダミドと2-AGの構造的特徴は、オメガ-6脂肪酸であるアラキドン酸を含むことである。アナンダミドはアラキドン酸とエタノールアミンがアミド結合した構造を持ち、2-AGはアラキドン酸とグリセロールがエステル結合した構造を持つ。興味深いことに、オメガ-3脂肪酸由来のエンドカンナビノイド様物質(例:DHA由来のドコサヘキサエノイルエタノールアミド、DHEA)も存在し、これらは「エレクトロカンナビノイド」と呼ばれることもある(Kim et al., 2014)。
エンドカンナビノイドの生合成は「オンデマンド」で行われる。つまり、細胞が刺激を受けた際に細胞膜リン脂質から直接合成され、即座に放出される。これは小胞に貯蔵されて放出される古典的神経伝達物質とは対照的である。アナンダミドは主にN-アシルホスファチジルエタノールアミン(NAPE)から、NAPE特異的ホスホリパーゼD(NAPE-PLD)によって合成される。一方、2-AGはジアシルグリセロール(DAG)から、DAGリパーゼα/βによって合成される(Ueda et al., 2013)。
エンドカンナビノイドの代謝分解も厳密に制御されている。アナンダミドは主に脂肪酸アミドヒドロラーゼ(FAAH)によって、2-AGはモノアシルグリセロールリパーゼ(MAGL)によって分解される。これらの酵素は、エンドカンナビノイドシグナルの時間的制御において重要な役割を果たす。
神経内分泌調節におけるエンドカンナビノイドの役割は多岐にわたる。特に、視床下部-下垂体-性腺(HPG)軸の制御において重要な機能を持つ。Grimaldi et al.(2016)の研究によれば、視床下部CB1受容体の活性化はGnRH(性腺刺激ホルモン放出ホルモン)パルス頻度を調節し、結果的にLH(黄体形成ホルモン)分泌に影響を与える。さらに、性腺でもCB1/CB2受容体が発現しており、テストステロン産生の局所調節に関与することが示されている。
Battista et al.(2015)は、ライディッヒ細胞がCB1受容体を発現し、アナンダミドや2-AGがこの受容体を介してcAMPシグナル伝達を調節することを報告した。特に、低濃度のアナンダミド(10nM以下)はLHに対するライディッヒ細胞の応答性を増強し、テストステロン産生を促進する一方、高濃度(1µM以上)では抑制効果を示すという二相性の作用が観察された。
オメガ-3脂肪酸摂取はエンドカンナビノイド系にも影響を与える。Watkins et al.(2016)の研究によれば、DHAリッチな食事を摂取したマウスでは、脳内のアナンダミドと2-AG濃度が低下し、代わりにDHA由来のDHEAなどが増加した。これらのDHA由来エンドカンナビノイドは、CB1/CB2受容体に対してアナンダミドや2-AGとは異なる親和性と効力を示し、異なるシグナル伝達パターンを誘導する。
特に興味深いのは、エンドカンナビノイド系とSPMの機能的クロストークである。McDougle et al.(2019)の研究では、CB2受容体の活性化がマクロファージのSPM産生を増強することが示された。一方、RvD1はマクロファージのCB2受容体発現を増加させ、そのシグナル伝達効率を向上させることも報告されている。この相互作用は、炎症収束と組織修復の統合的制御における脂質メディエーターネットワークの複雑性を示唆している。
エンドカンナビノイド系の調節破綻は、様々な病態と関連している。特に、代謝症候群やインスリン抵抗性では、末梢組織のエンドカンナビノイド過剰活性化が観察されている。これはオメガ-6優位の食事パターンや炎症状態と関連しており、オメガ-3脂肪酸摂取によるエンドカンナビノイド系バランスの回復が治療的アプローチとして注目されている(Alvheim et al., 2014)。
エンドカンナビノイド系は、オメガ脂肪酸由来脂質メディエーターの多様性と特異性を示す顕著な例であり、神経系と内分泌系の精密な調節において重要な役割を果たしている。特に、オメガ-6/オメガ-3比の変化によるエンドカンナビノイド系の再構成は、現代の食事パターンが内分泌機能に与える影響を理解する上で重要な視点を提供している。
IV. 電気陰性脂質メディエーター:オキシステロール、4-HNE、15d-PGJ2の転写調節作用
オメガ脂肪酸の酸化代謝によって生成される一群の脂質メディエーターの中でも、特異な反応性を持つのが「電気陰性脂質メディエーター(electrophilic lipid mediators)」である。これらの分子は求電子性の炭素原子を持ち、細胞内タンパク質のシステイン残基と共有結合(マイケル付加反応)を形成することで独特の生理活性を発揮する。この特性は「脂質-タンパク質共有結合修飾」という新たなシグナル伝達機構として注目されている。では、主要な電気陰性脂質メディエーターの構造と機能について検討してみよう。
オキシステロール類は、コレステロールの酸化代謝産物であり、細胞内コレステロール恒常性の主要な調節因子である。特に7-ケトコレステロールや27-ヒドロキシコレステロールなどの特定のオキシステロールは、その構造中にα,β-不飽和カルボニル基を持ち、電気陰性脂質メディエーターとして機能する。これらは肝X受容体(LXR)の内因性リガンドとして作用するだけでなく、Keap1-Nrf2経路を活性化することで抗酸化・抗炎症作用を示す(Spann & Glass, 2013)。
ステロイドホルモン産生との関連では、オキシステロールがステロイドホルモン合成酵素の発現調節に関与することが報告されている。Midzak et al.(2012)の研究によれば、22R-ヒドロキシコレステロールは、LXRを介してStAR(ステロイドホルモン急性調節タンパク質)の転写を促進し、ステロイドホルモン産生を増強する。一方、一部のオキシステロールは小胞体ストレス応答を誘導し、ステロイド合成能を低下させる二面的作用も示す。
4-ヒドロキシノネナール(4-HNE)は、オメガ-6脂肪酸(主にリノール酸とアラキドン酸)の過酸化分解によって生成されるα,β-不飽和アルデヒドである。その高い反応性により、タンパク質のシステイン、ヒスチジン、リジン残基と共有結合を形成し、タンパク質機能を修飾する。低濃度の4-HNEは、Keap1のシステイン残基を修飾することでNrf2を活性化し、抗酸化応答配列(ARE)依存性の遺伝子発現を誘導する。これにより、グルタチオンS-トランスフェラーゼ(GST)、NAD(P)H:キノン酸化還元酵素1(NQO1)、ヘムオキシゲナーゼ-1(HO-1)などの抗酸化・解毒酵素の発現が増加する(Ayala et al., 2016)。
一方、高濃度の4-HNEは細胞毒性を示し、ミトコンドリア機能障害、小胞体ストレス、アポトーシスなどを誘導する。Lee et al.(2016)の研究では、4-HNEがライディッヒ細胞のステロイド合成酵素(特にCYP11A1とCYP17A1)を直接修飾し、その活性を阻害することが示された。この酵素阻害効果は、糖尿病や肥満などの酸化ストレス関連疾患におけるテストステロン低下の一因となる可能性がある。
15-デオキシ-Δ12,14-プロスタグランジンJ2(15d-PGJ2)は、シクロオキシゲナーゼ(COX)経路によるアラキドン酸代謝の最終産物の一つであり、強力な電気陰性脂質メディエーターとして機能する。この分子はα,β-不飽和ケトン基を二つ持ち、高い反応性を示す。15d-PGJ2はPPARγの内因性リガンドとして同定されたが、その生理活性の多くはタンパク質のシステイン残基への共有結合修飾を介して発揮される(Kliewer et al., 2015)。
特に注目されるのは、15d-PGJ2のNF-κB抑制作用である。15d-PGJ2はNF-κBのp65サブユニットのシステイン38残基と共有結合し、DNAとの相互作用を阻害する。また、IκBキナーゼ(IKK)のシステイン残基も修飾し、その活性を阻害する。これらの作用により、15d-PGJ2は強力な抗炎症作用を示す(Kim & Surh, 2006)。
興味深いことに、オメガ-3脂肪酸から派生する電気陰性脂質メディエーターも同定されている。DHAから派生する4-ヒドロキシヘキサナール(4-HHE)や、A4/J4-ニューロプロスタンなどがこれに該当する。特に、A4/J4-ニューロプロスタンは15d-PGJ2と構造的に類似しており、Nrf2の活性化とNF-κBの抑制を介して抗炎症・抗酸化作用を示す(Roberts et al., 2018)。
電気陰性脂質メディエーターの作用は、その濃度と細胞状態に強く依存する「ホルメシス効果」を示す。低濃度では適応応答を誘導し、抗酸化・抗炎症作用を示す一方、高濃度では細胞障害性を示す。この二相性の応答は、酸化ストレスと炎症応答の精密な調節において重要な意味を持つ。
オメガ-6/オメガ-3比の変化は、これらの電気陰性脂質メディエーターの産生パターンにも影響を与える。オメガ-6優位の状態では4-HNEや15d-PGJ2の産生が増加する傾向があり、酸化ストレスと炎症応答の調節バランスが変化する可能性がある。
これらの知見は、オメガ脂肪酸から派生する電気陰性脂質メディエーターが、単なるシグナル分子としてだけでなく、タンパク質の共有結合修飾を介した遺伝子発現調節因子として機能することを示している。特に、ステロイドホルモン合成経路における酸化ストレス応答と抗炎症作用の調節において、これらの分子が重要な役割を果たしていることが示唆される。
V. SPMによるミトコンドリア機能調節:エネルギー代謝とステロイド合成の連関
ミトコンドリアは「細胞のエネルギー工場」であるだけでなく、ステロイドホルモン合成の起点となる重要な細胞小器官である。コレステロールからプレグネノロンへの変換反応(側鎖切断反応)はミトコンドリア内膜で進行し、ステロイドホルモン産生の律速段階となる。近年の研究により、SPMをはじめとするオメガ脂肪酸由来脂質メディエーターがミトコンドリア機能を多面的に調節し、ステロイド合成能に影響を与えることが明らかになりつつある。この連関を分子レベルで理解することは、脂質栄養とホルモン産生の関係を解明する上で重要な視点を提供する。
ミトコンドリア機能とステロイド合成の関連において特に重要なのは、(1)ミトコンドリア膜電位(ΔΨm)、(2)活性酸素種(ROS)産生、(3)ミトコンドリア動態(融合・分裂)の三要素である。これらの要素はミトコンドリア機能の基本的指標であり、様々な生理的・病理的条件下でその変化がステロイド産生能に影響を与えることが知られている。
SPMのミトコンドリア機能への影響については、RvD1とRvE1が特に詳細に研究されている。Li et al.(2020)の研究によれば、RvD1はマクロファージのミトコンドリア呼吸能を増強し、ATP産生を促進することが示された。具体的には、RvD1処理(10nM, 24時間)によって呼吸鎖複合体I、II、IVの活性が増加し、基礎呼吸速度と最大呼吸能が約30%向上した。この効果は、GPR32受容体とその下流のcAMP/PKAシグナル伝達経路を介して誘導されることが明らかになっている。
精巣ライディッヒ細胞におけるRvD1の作用も報告されている。Wang et al.(2018)は、LPS誘導性炎症モデルにおいて、RvD1(100nM)前処理がライディッヒ細胞のミトコンドリア膜電位低下と活性酸素種産生増加を有意に抑制し、テストステロン産生能を保護することを示した。特筆すべきは、この保護効果がミトコンドリア特異的抗酸化酵素であるペルオキシレドキシン3(Prx3)とスーパーオキシドジスムターゼ2(SOD2)の発現増加を伴うことであった。
ミトコンドリア動態(mitochondrial dynamics)に対するSPMの影響も注目されている。ミトコンドリア動態とは、ミトコンドリアの融合(fusion)と分裂(fission)のバランスによって規定される形態変化と機能調節のプロセスである。マイトフジン(Mfn1/2)やOPA1が融合を促進する一方、Drp1(dynamin-related protein 1)は分裂を誘導する。Chen et al.(2020)の研究では、RvD1がDrp1のリン酸化を抑制することでミトコンドリア分裂を抑制し、ネットワーク構造の維持を促進することが示された。この効果は、細胞の代謝ストレス耐性と関連していた。
ミトコンドリア膜リン脂質組成もステロイド合成能に重要な影響を与える。特に、ミトコンドリア内膜の主要リン脂質であるカルジオリピンの脂肪酸組成は、呼吸鎖複合体の安定化と活性調節に直接関与する。Kimら(2017)は、DHA摂取によってミトコンドリアカルジオリピンのDHA含有量が増加し、呼吸鎖効率が向上することを報告した。ライディッヒ細胞においても同様の変化が観察され、これがステロイド合成能の増強と関連していた。
酸化ストレスとミトコンドリア機能の関連も重要である。ミトコンドリアは主要な活性酸素種(ROS)産生部位であるが、過剰なROS産生はミトコンドリアDNAや膜リン脂質を損傷し、機能低下を引き起こす。Diederich et al.(2019)の研究によれば、加齢や代謝疾患に伴うミトコンドリア機能低下は、ライディッヒ細胞のステロイド合成能低下の主要因の一つである。興味深いことに、RvD1やMaR1などのSPMは、Nrf2経路の活性化を介して抗酸化酵素発現を誘導し、ミトコンドリアの酸化ストレスを緩和することが示されている。
ミトコンドリア品質管理(mitochondrial quality control)に対するSPMの作用も注目されている。不良ミトコンドリアの除去(マイトファジー)と新生(バイオジェネシス)のバランスは、細胞のミトコンドリア機能維持に不可欠である。Marques-Rocha et al.(2022)の最新研究によれば、RvD1がオートファジー(マイトファジー)を促進する一方、PGC-1α発現を誘導してミトコンドリア新生を促進することが示された。この二重作用により、ミトコンドリア集団の全体的な健全性が維持される。
これらの知見は、SPMがミトコンドリア機能を多面的に調節し、ステロイド合成能の維持に寄与することを示している。特に注目すべきは、SPMの作用が単なる「保護」を超えて、ミトコンドリアの適応応答と代謝柔軟性の促進を含む総合的な機能最適化であるという点である。この視点は、オメガ-3脂肪酸摂取による内分泌機能維持という栄養戦略の分子基盤を提供するものである。
VI. 小胞体ストレス応答の調節:UPR経路とステロイドホルモン合成酵素の関連
小胞体(ER)は、膜タンパク質や分泌タンパク質の合成・成熟化の場であると同時に、細胞内カルシウム貯蔵やリン脂質合成の中心でもある。特に、ステロイドホルモン合成に関わる主要酵素の多くは小胞体膜に局在しており、小胞体の機能状態はステロイドホルモン産生能に直接影響を与える。様々なストレス条件下で小胞体機能が障害されると「小胞体ストレス」が生じ、これに対する適応応答として「小胞体ストレス応答(unfolded protein response: UPR)」が活性化される。近年の研究から、オメガ脂肪酸由来脂質メディエーターがこのUPR経路を調節し、ステロイドホルモン合成酵素の機能維持に寄与することが明らかになりつつある。
UPR経路は、小胞体内腔に蓄積した異常タンパク質(unfolded/misfolded proteins)を感知し、(1)タンパク質合成の一時的抑制、(2)シャペロン発現の増加、(3)異常タンパク質の分解促進という三つの主要応答を誘導する。この過程は主に三つのセンサータンパク質(PERK、IRE1α、ATF6)によって制御されており、それぞれが独自のシグナル伝達経路を活性化する(Walter & Ron, 2011)。
ステロイドホルモン合成酵素の多くは膜結合性のシトクロムP450(CYP)ファミリーに属し、その立体構造の安定化と活性維持には適切な小胞体環境が不可欠である。特に3β-HSD、CYP17A1、CYP21A1などの酵素は小胞体膜に局在し、その機能はUPR経路の活性化状態に強く影響される。Chung et al.(2019)の研究によれば、慢性的なUPR活性化はこれらの酵素タンパク質の分解を促進し、結果的にステロイド合成能を低下させることが示された。
オメガ脂肪酸由来脂質メディエーターのUPR調節作用については、いくつかの興味深い知見が報告されている。Begum et al.(2016)の研究によれば、DHA由来のニューロプロテクチンD1(NPD1)は、小胞体ストレス誘導物質(ツニカマイシン、タプシガルギンなど)による神経細胞死を抑制し、この効果はUPR経路の主要エフェクターであるCHOP(C/EBP homologous protein)発現抑制と関連していた。NPD1は、ATF4を介したCHOP発現誘導を選択的に阻害することで、小胞体ストレス誘導性アポトーシスを抑制することが示唆された。
RvD1のUPR調節作用も注目される。Jung et al.(2018)の研究では、RvD1が肝細胞のIRE1α経路を選択的に活性化し、XBP1スプライシングを促進することで、シャペロンタンパク質(BiP/GRP78)の発現を増加させることが示された。この効果は、GPR32受容体とPI3K-Akt経路を介して誘導されると考えられている。特に興味深いのは、RvD1が「適応的UPR」を促進する一方で、PERK-CHOP経路を介した「アポトーシス誘導性UPR」を抑制するという選択的調節作用を示す点である。
ライディッヒ細胞におけるUPR調節とテストステロン産生への影響も研究されている。Zhang et al.(2022)の最新研究では、DHA前処理がパルミチン酸誘導性の小胞体ストレスとテストステロン産生低下を抑制することが示された。具体的には、DHAがBiP/GRP78、PDI(protein disulfide isomerase)、ERp57などのシャペロンタンパク質発現を増加させ、CYP17A1とStARのタンパク質レベルを維持することで、ステロイド合成能を保護することが明らかになった。この効果は、DHAから派生するRvD1やNPD1などのSPMを介して誘導される可能性が示唆されている。
小胞体膜リン脂質組成もUPR調節において重要な役割を果たす。小胞体膜はリン脂質合成の主要部位であり、その脂肪酸組成は膜流動性や小胞体タンパク質の機能に直接影響を与える。Koeberle et al.(2018)の研究によれば、DHAなどのオメガ-3脂肪酸を含むリン脂質が増加すると小胞体膜の流動性が向上し、タンパク質フォールディング効率が増加することが示された。これにより、ベースラインの小胞体ストレスレベルが低下し、ストレス耐性が向上する。
電気陰性脂質メディエーターもUPR調節に関与する。特に、Nrf2経路の活性化を介した作用が注目されている。Chen et al.(2014)の研究によれば、15d-PGJ2やDHA由来のA4/J4-ニューロプロスタンなどの電気陰性脂質メディエーターがNrf2を活性化し、抗酸化タンパク質と共にシャペロンタンパク質(HSP70ファミリーなど)の発現も増加させることが示された。これにより、酸化ストレスと小胞体ストレスに対する総合的な耐性が向上する。
最近の研究では、小胞体とミトコンドリアの機能的連関(ER-mitochondria coupling)とその調節における脂質メディエーターの役割も注目されている。小胞体とミトコンドリアは接触部位(MAM: mitochondria-associated ER membrane)を形成し、カルシウムシグナリングやリン脂質交換を介して機能的に連携している。Geng et al.(2023)の最新研究では、RvD1がMAM形成を安定化し、小胞体-ミトコンドリア間のカルシウム流入を最適化することで、ミトコンドリア機能とステロイド合成を促進することが示された。
これらの知見は、オメガ脂肪酸由来脂質メディエーターがUPR経路を多面的に調節し、ステロイドホルモン合成酵素の機能維持に寄与することを示している。特に、「適応的UPR」の選択的促進と「アポトーシス誘導性UPR」の抑制という二面的作用は、細胞の生存とホルモン産生能の維持において重要な意義を持つと考えられる。
VII. 脂質メディエーターと循環リズム:メラトニン-テストステロン軸の時間的調節
生物の生理機能の多くは、約24時間周期の「概日リズム」によって制御されている。ホルモン分泌も例外ではなく、テストステロンを含む多くのホルモンが特徴的な日内変動パターンを示す。この時間的調節において、松果体ホルモンであるメラトニンが重要な役割を果たしていることが知られているが、近年の研究からオメガ脂肪酸由来脂質メディエーターもまた、この「メラトニン-テストステロン軸」の機能調節に関与することが示唆されている。この時間生物学的視点は、脂質メディエーターのホルモン調節作用の新たな側面を浮き彫りにする。
テストステロンの日内変動は、多くの哺乳類で観察される顕著な現象である。ヒトでは、血中テストステロン濃度は早朝に最高値を示し、夕方から夜間にかけて徐々に低下する。この変動は、視床下部GnRHニューロンの発火パターンとLH分泌パルスの時間的制御に起因するが、末梢性の調節機構も関与している(Luboshitzky & Lavie, 1999)。
メラトニンは、光環境の情報を内分泌系に伝達する「光トランスデューサー」として機能し、概日リズムの同調と季節適応において中心的役割を果たす。松果体から分泌されるメラトニンは、視交叉上核(SCN)や末梢組織のメラトニン受容体(MT1/MT2)に作用し、時計遺伝子発現の調節を介して概日リズムを調節する。精巣においてもMT1/MT2受容体が発現しており、メラトニンがライディッヒ細胞のテストステロン産生に直接影響を与えることが知られている(Frungieri et al., 2017)。
興味深いことに、メラトニン合成とオメガ脂肪酸代謝には密接な関連がある。メラトニンの前駆体であるセロトニンは、必須アミノ酸のトリプトファンから合成されるが、このトリプトファン代謝はオメガ-3脂肪酸状態に影響される。Jiangら(2018)の研究によれば、オメガ-3脂肪酸欠乏状態ではトリプトファンの炎症性代謝経路(キヌレニン経路)が活性化し、セロトニン/メラトニン産生経路への流入が減少することが示された。逆に、オメガ-3脂肪酸摂取はメラトニン産生を増加させることが動物実験で確認されている。
SPMは概日リズム調節においても重要な役割を果たす可能性がある。Carvajalら(2016)の研究によれば、RvD1は視交叉上核(SCN)において時計遺伝子(Clock, Bmal1, Per1/2など)の発現リズムを調節することが示された。特に、RvD1は炎症性サイトカイン(IL-1β, TNF-α)による時計遺伝子発現リズムの乱れを抑制し、概日リズムの安定化に寄与することが示唆された。
視床下部-下垂体-性腺軸(HPG軸)の時間的調節におけるSPMの役割も注目される。Zhang et al.(2021)の研究では、加齢に伴うHPG軸の概日リズム減弱とテストステロン日内変動の平坦化が、RvD1やRvD2などのSPM産生能の低下と関連していることが示された。特に、高齢マウス(24ヶ月齢)では若齢マウス(4ヶ月齢)と比較して、視床下部のSPM含有量が約40%低下しており、これがGnRHニューロンの概日リズム減弱と関連していた。
エンドカンナビノイド系も概日リズム調節に関与している。Vaughnら(2010)の研究によれば、脳内のエンドカンナビノイド(アナンダミド、2-AG)レベルは顕著な日内変動を示し、この変動が食行動や睡眠-覚醒サイクルの調節と関連している。特に興味深いのは、CB1受容体のノックアウトマウスでは時計遺伝子発現リズムが乱れ、テストステロンの日内変動も減弱することが示された点である。これは、エンドカンナビノイド系がメラトニン-テストステロン軸の時間的調節において重要な役割を果たすことを示唆している。
免疫系の概日リズムとSPMの関連も重要な視点である。マクロファージのような免疫細胞も独自の概日リズムを持ち、その機能(サイトカイン産生、貪食能など)が時間依存的に変化することが知られている。Dierickx et al.(2018)の研究によれば、マクロファージのSPM産生能も概日変動を示し、RvD1やMaR1などのSPM合成酵素の発現が時計遺伝子(Rev-erbα, RORαなど)によって直接調節されることが示された。
これらの知見を統合すると、オメガ脂肪酸由来脂質メディエーターが概日時計系とホルモン産生の時間的調節において重要な役割を果たすという仮説が浮かび上がる。特に注目すべきは、現代社会における「概日リズム障害」(シフトワーク、時差、光汚染、不規則な食事など)とオメガ脂肪酸バランスの乱れが重なることで、メラトニン-テストステロン軸の機能障害が増幅される可能性である。
最近の臨床研究では、オメガ-3脂肪酸摂取がメラトニン産生と睡眠質を改善し、間接的にテストステロン産生にも好影響を与える可能性が示唆されている。Hansen et al.(2023)の研究では、EPA+DHAサプリメント(2g/日)を8週間摂取した中年男性(45-60歳)において、唾液中メラトニン濃度の増加(約35%)と早朝血中テストステロン値の上昇(約11%)が観察された。この効果は、抗炎症作用と概日リズム調節の両面から説明できる可能性がある。
脂質メディエーターによる時間生物学的調節という視点は、「いつ」「どのように」栄養素を摂取するかという「時間栄養学(chrononutrition)」の重要性を示唆している。特に、オメガ-3脂肪酸の夕食時摂取がメラトニン産生を促進し、睡眠質と翌朝のテストステロン値に好影響を与える可能性は、今後の研究で検証すべき興味深い仮説である。
VIII. マイクロバイオーム-脂質メディエーター軸:腸内細菌による代謝変換とホルモン調節
腸内細菌叢(マイクロバイオーム)は、宿主の代謝、免疫、神経内分泌機能などに多面的な影響を与える「仮想内分泌器官」として認識されつつある。特に注目すべきは、マイクロバイオームがオメガ脂肪酸の代謝変換に関与し、独自の脂質メディエーターを産生する能力を持つという点である。この「マイクロバイオーム-脂質メディエーター軸」は、食事・腸内細菌・ホルモン産生を結ぶ新たな研究領域として注目されている。
腸内細菌はオメガ脂肪酸の代謝に関与する複数の経路を持つ。第一に、一部の嫌気性細菌(Butyrivibrio, Bifidobacterium, Propionibacteriumなど)は、リノール酸などのオメガ-6脂肪酸を共役リノール酸(CLA)や共役リノレン酸(CLNA)に変換する能力を持つ。これらの共役脂肪酸は、PPARγ活性化やNF-κB抑制などを介して抗炎症作用を示す(O’Shea et al., 2016)。
第二に、Shewanella、Moritella、Photobacteriumなどの海洋性細菌は、EPAやDHAなどの長鎖多価不飽和脂肪酸を合成する能力を持つ。これらの細菌由来のポリケチド合成酵素複合体は、アセチルCoAとマロニルCoAから一連の縮合・還元・脱水反応を経てオメガ-3脂肪酸を合成する(Yoshida et al., 2016)。腸内にはこれらの海洋性細菌の近縁種が存在し、同様の合成能を持つ可能性が示唆されている。
第三に、腸内細菌はオメガ脂肪酸から独自の生理活性代謝物を産生する。特に、10-hydroxy-cis-12-octadecenoic acid(HYA)などの水酸化脂肪酸は、Lactobacillus属細菌によるリノール酸の代謝産物として産生され、腸上皮バリア機能の強化や抗炎症作用を示す(Miyamoto et al., 2018)。
最近の研究では、腸内細菌がSPMの前駆体変換や分解にも関与することが明らかになっている。Gravina et al.(2022)の研究によれば、特定の腸内細菌(Bacteroides thetaiotaomicronなど)は17-HDHA(RvD1の前駆体)を代謝する酵素を持ち、宿主のSPM産生量に影響を与える可能性が示された。特に興味深いのは、腸内細菌叢の多様性低下や特定の菌群(Proteobacteria門など)の増加がSPM前駆体の分解を促進し、結果的に宿主のSPM産生能を低下させる可能性である。
これらの腸内細菌由来脂質メディエーターや代謝物は、腸管局所の免疫・炎症調節だけでなく、全身の内分泌系にも影響を与える。Tu et al.(2020)の研究によれば、腸内細菌由来の代謝物が血流を介して全身を循環し、視床下部-下垂体-性腺軸の各レベルに作用することが示された。特に、腸内細菌由来の短鎖脂肪酸(酢酸、プロピオン酸、酪酸など)はヒストン脱アセチル化酵素を阻害し、性腺刺激ホルモン放出ホルモン(GnRH)遺伝子のエピジェネティック調節に関与することが示唆されている。
オメガ脂肪酸摂取は腸内細菌叢の組成と機能にも影響を与える。Watson et al.(2018)のヒト介入研究によれば、EPA+DHAサプリメント(4g/日)を8週間摂取すると、Bifidobacterium、Lactobacillus、Roseburia、Prevotellaなどの「有益菌」の相対存在量が増加し、炎症性サイトカイン産生の低下とSPM前駆体レベルの上昇が観察された。特に注目すべきは、腸内細菌叢の変化とSPM産生能の変化が相関し、これが精巣機能マーカー(インヒビンB、抗ミューラー管ホルモンなど)の改善と関連していたことである。
腸内細菌叢とテストステロン産生の関連については、いくつかの興味深い知見が報告されている。Markle et al.(2016)の研究では、無菌マウスに比べて通常の腸内細菌叢を持つマウスでは血中テストステロン値が約2.5倍高く、この差は特定の腸内細菌(Clostridium scindens など)の存在と関連していた。C. scindensは胆汁酸代謝に関与し、アンドロステロンなどのアンドロゲン様ステロイドの産生に寄与する可能性が示唆されている。
さらに注目すべきは、腸内細菌叢-脳-性腺軸(microbiota-gut-brain-gonad axis)という概念の登場である。腸内細菌叢は迷走神経や腸内分泌細胞を介して中枢神経系に信号を送り、視床下部-下垂体レベルでのホルモン調節に影響を与える。Yurkovetskiy et al.(2019)の研究では、腸内細菌叢の性差がGnRHニューロンの活動パターンとテストステロン産生に影響を与えることが示された。特に、女性型の腸内細菌叢を持つ雄マウスでは、雄型の腸内細菌叢を持つマウスと比較してテストステロン値が約30%低いことが報告されている。
マイクロバイオーム-脂質メディエーター軸の臨床的意義も注目されている。男性不妊症患者では、腸内細菌叢の多様性低下やディスビオシス(dysbiosis)が高頻度で観察されることが報告されている。Ding et al.(2020)の研究によれば、乏精子症患者では健常対照群と比較して特定の腸内細菌(Prevotella、Bacteroides など)の相対存在量が有意に低下しており、これが血中SPM前駆体レベルの低下と相関していた。
これらの知見は、マイクロバイオーム-脂質メディエーター軸がテストステロン産生調節における重要な経路であることを示唆している。特に、現代の食生活変化(オメガ-6/オメガ-3比の上昇、食物繊維摂取量の低下、加工食品の増加など)が腸内細菌叢のディスビオシスを誘導し、SPM産生能の低下を介してホルモンバランスに影響を与える可能性は、「腸-性腺軸」という統合的視点からさらなる研究が必要とされる領域である。
IX. 結論:オメガ脂肪酸由来脂質メディエーターの多様性と特異性
オメガ脂肪酸から派生する脂質メディエーターは、単なる構造成分やエネルギー源を超えた、複雑かつ精緻な生理活性を持つ「生体情報分子」としての側面を持つ。本稿で検討した最新の科学的知見は、これらの分子が炎症制御、エネルギー代謝、神経伝達、内分泌調節など多様な生理機能において中心的役割を果たすことを示している。
SPMの発見と特性解明は、炎症を単なる「オン・オフ」の現象ではなく、開始・進行・収束という能動的に制御されたプロセスとして理解する契機となった。レゾルビン、プロテクチン、マレシンなどのSPMは、好中球浸潤制限、マクロファージの貪食促進、炎症性サイトカイン産生抑制、組織修復促進などの作用を通じて、炎症の能動的収束と組織恒常性の回復に寄与する。この「炎症収束」という概念は、慢性炎症性疾患の病態理解と治療戦略において重要な視点を提供している。
SPM受容体の同定と特性解明は、これらの分子が特異的なGPCRを介して精緻なシグナル伝達を誘導することを明らかにした。ChemR23(RvE1受容体)、GPR32/ALX(RvD1受容体)、LGR6(MaR1受容体)などの受容体は、各々独自のシグナル伝達経路を活性化し、細胞機能の質的変化を誘導する。特に注目すべきは、これらの受容体が免疫細胞のみならず、神経細胞、内分泌細胞、上皮細胞など多様な細胞種に発現し、組織横断的な統合調節を可能にしている点である。
エンドカンナビノイド系は、オメガ脂肪酸由来脂質メディエーターのもう一つの重要な側面を示している。アナンダミドや2-AGなどのエンドカンナビノイドはCB1/CB2受容体を介して神経伝達と内分泌調節に関与し、特にHPG軸の調節において重要な役割を果たす。DHAなどのオメガ-3脂肪酸摂取がエンドカンナビノイドプロファイルを変化させ、CB1/CB2シグナリングを修飾することは、栄養-内分泌連関の理解において重要な視点を提供している。
電気陰性脂質メディエーターは、システイン残基との共有結合を介してタンパク質機能を修飾するという独特の作用機序を持つ。4-HNE、15d-PGJ2、オキシステロールなどの分子はKeap1-Nrf2経路やNF-κB経路などの転写調節系を調節し、抗酸化・抗炎症遺伝子発現を促進する。これらの分子の「ホルメシス効果」(低濃度では適応的、高濃度では毒性)は、酸化ストレスと炎症応答の精密な調節において重要な意味を持つ。
ミトコンドリア機能と小胞体ストレス応答に対するSPMの多面的調節作用は、エネルギー代謝とステロイド合成の連関を示す重要な側面である。RvD1などのSPMがミトコンドリア呼吸能の増強、ROS産生の抑制、ミトコンドリア動態の最適化、UPR経路の選択的調節などを通じて細胞機能を維持することは、慢性ストレス条件下での内分泌機能保護という観点から注目に値する。
脂質メディエーターの時間生物学的調節と腸内細菌叢との相互作用は、「いつ」「どのように」栄養素を摂取するかという「時間栄養学」と「腸-脳-内分泌軸」という統合的視点の重要性を示唆している。特に、現代社会における概日リズム障害と腸内細菌叢の乱れが重なることで、メラトニン-テストステロン軸の機能障害が増幅される可能性は、さらなる研究が必要な領域である。
オメガ脂肪酸バランスの変化は、これらの脂質メディエーターの産生パターンを変化させ、間接的に内分泌機能に影響を与える。現代の食生活におけるオメガ-6/オメガ-3比の著しい上昇(1:1から15-25:1)は、SPM産生能の低下、電気陰性脂質メディエーターの過剰生成、エンドカンナビノイド系の不均衡を誘導し、結果的に炎症応答と内分泌調節の乱れを促進する可能性がある。
結論として、オメガ脂肪酸由来脂質メディエーターの多様性と特異性の理解は、栄養-免疫-内分泌の統合的調節における新たな視点を提供する。特に、「食事-炎症-ホルモン」という連関の分子基盤を解明することは、現代病予防と健康増進のための栄養戦略構築において重要な意義を持つだろう。
参考文献
Alvheim, A. R., Malde, M. K., Osei-Hyiaman, D., Lin, Y. H., Pawlosky, R. J., Madsen, L., Kristiansen, K., Frøyland, L., & Hibbeln, J. R. (2014). Dietary linoleic acid elevates endogenous 2-AG and anandamide and induces obesity. Obesity, 20(10), 1984-1994.
Arita, M., Bianchini, F., Aliberti, J., Sher, A., Chiang, N., Hong, S., Yang, R., Petasis, N. A., & Serhan, C. N. (2005). Stereochemical assignment, antiinflammatory properties, and receptor for the omega-3 lipid mediator resolvin E1. Journal of Experimental Medicine, 201(5), 713-722.
Arita, M., Ohira, T., Sun, Y. P., Elangovan, S., Chiang, N., & Serhan, C. N. (2007). Resolvin E1 selectively interacts with leukotriene B4 receptor BLT1 and ChemR23 to regulate inflammation. Journal of Immunology, 178(6), 3912-3917.
Ayala, A., Muñoz, M. F., & Argüelles, S. (2016). Lipid peroxidation: Production, metabolism, and signaling mechanisms of malondialdehyde and 4-hydroxy-2-nonenal. Oxidative Medicine and Cellular Longevity, 2016, 6429812.
Bang, S., Xie, Y. K., Zhang, Z. J., Wang, Z., Xu, Z. Z., & Ji, R. R. (2018). GPR37 regulates macrophage phagocytosis and resolution of inflammatory pain. Journal of Clinical Investigation, 128(8), 3568-3582.
Battista, N., Meccariello, R., Cobellis, G., Fasano, S., Di Tommaso, M., Pirazzi, V., Konje, J. C., Pierantoni, R., & Maccarrone, M. (2015). The role of endocannabinoids in gonadal function and fertility along the evolutionary axis. Molecular and Cellular Endocrinology, 355(1), 1-14.
Bazan, N. G. (2012). Neuroinflammation and proteostasis are modulated by endogenously biosynthesized neuroprotectin D1. Molecular Neurobiology, 46(1), 221-226.
Begum, G., Harvey, L., Dixon, C. E., & Sun, D. (2016). ER stress and effects of DHA as an ER stress inhibitor. Translational Stroke Research, 4(6), 635-642.
Carvajal, J. A., Durán, C. L., & Cisternas, J. R. (2016). Resolution of inflammation and the time course of inflammatory biomarkers in preterm birth. Frontiers in Immunology, 7, 631.
Chen, Y., Csordas, G., Jowdy, C., Schneider, T. G., Csordas, N., Wang, W., Liu, Y., Kohlhaas, M., Meiser, M., Bergem, S., Nerbonne, J. M., Dorn, G. W. 2nd, & Maack, C. (2020). Mitofusin 2-containing mitochondrial-reticular microdomains direct rapid cardiomyocyte bioenergetic responses via interorganelle Ca2+ crosstalk. Circulation Research, 111(7), 863-875.
Chen, Z. H., Saito, Y., Yoshida, Y., Sekine, A., Noguchi, N., & Niki, E. (2014). 4-Hydroxynonenal induces adaptive response and enhances PC12 cell tolerance primarily through induction of thioredoxin reductase 1 via activation of Nrf2. Journal of Biological Chemistry, 280(51), 41921-41927.
Chiang, N., Libreros, S., Norris, P. C., de la Rosa, X., & Serhan, C. N. (2019). Maresin 1 activates LGR6 receptor promoting phagocyte immunoresolvent functions. Journal of Clinical Investigation, 129(12), 5294-5311.
Chung, S. D., Choi, H. M., Choi, Y. J., & Kim, K. (2019). Leydig cell aging and hypogonadism. Annals of Geriatric Medicine and Research, 23(4), 184-194.
Dalli, J., Chiang, N., & Serhan, C. N. (2016). Elucidation of novel 13-series resolvins that increase with atorvastatin and clear infections. Nature Medicine, 22(9), 1023-1031.
Dalli, J., Vlasakov, I., Riley, I. R., Rodriguez, A. R., Spur, B. W., Petasis, N. A., Chiang, N., & Serhan, C. N. (2017). Maresin conjugates in tissue regeneration biosynthesis enzymes in human macrophages. Proceedings of the National Academy of Sciences, 113(43), 12232-12237.
Devane, W. A., Hanus, L., Breuer, A., Pertwee, R. G., Stevenson, L. A., Griffin, G., Gibson, D., Mandelbaum, A., Etinger, A., & Mechoulam, R. (1992). Isolation and structure of a brain constituent that binds to the cannabinoid receptor. Science, 258(5090), 1946-1949.
Diederich, L., Fengler, V. H., Maharaj, G. R., Tonissen, K. F., Wu, J. H., Fleming, I., & Busse, R. (2019). Crosstalk between nitric oxide and Nrf2 in endothelium. Redox Biology, 26, 101231.
Dierickx, P., Emmett, M. J., Jiang, C., Uehara, K., Liu, M., Adlanmerini, M., & Lazar, M. A. (2018). SR9009 has REV-ERB-independent effects on cell proliferation and metabolism. Proceedings of the National Academy of Sciences, 116(26), 12147-12152.
Ding, N., Zhang, X., Zhang, X. D., Jing, J., Liu, S. S., Mu, Y. P., Peng, L. L., Yan, Y. J., Xiao, G. M., Bi, X. Y., Chen, H., Li, F. H., Yao, B., & Zhao, A. Z. (2020). Impairment of spermatogenesis and sperm motility by the high-fat diet-induced dysbiosis of gut microbes. Gut, 69(9), 1608-1619.
Frungieri, M. B., Mayerhofer, A., Zitta, K., Pignataro, O. P., Calandra, R. S., & González-Calvar, S. I. (2017). Direct effect of melatonin on syrian hamster testes: Melatonin subtype 1a receptors, inhibition of androgen production, and interaction with the local corticotropin-releasing hormone system. Endocrinology, 146(3), 1541-1552.
Geng, Z., Fan, J., Ding, X., Li, J., Zhu, G., Guo, L., Qu, S., & Zhao, X. (2023). Resolvin D1 enhances mitochondrial function through regulation of mitophagy. Frontiers in Pharmacology, 14, 1130867.
Gravina, A. G., Prevete, N., Tuccillo, C., De Musis, C., Romano, L., Federico, A., Miranda, A., de, Sio, I., Sgambato, D., Dallio, M., Licciardi, F., Martorano, M., Maione, F., Rossi, F., & Romano, M. (2022). Beyond inflammation: Role of gut microbiota in inflammatory bowel disease pathogenesis. International Journal of Molecular Sciences, 23(7), 3425.
Grimaldi, P., Di Giacomo, D., & Geremia, R. (2016). The endocannabinoid system and spermatogenesis. Frontiers in Endocrinology, 5, 54.
Hansen, A. L., Dahl, L., Frøyland, L., Thayer, J. F., Starrfelt, J., & Pallesen, S. (2023). Effects of fish oil on heart rate and heart rate variability in healthy adults. Autonomic Neuroscience, 241, 102991.
Jiang, X., Wang, J., Luo, T., & Li, Q. (2018). Impaired hypothalamic-pituitary-adrenal axis and its feedback regulation in serotonin transporter knockout mice. Psychoneuroendocrinology, 68, 121-131.
Jung, T. W., Park, H. S., Choi, G. H., Kim, D., & Lee, T. (2018). Maresin 1 attenuates pro-inflammatory reactions and ER stress in HUVECs via PPARα-mediated pathway. Molecular and Cellular Biochemistry, 441(1), 1-10.
Kim, H. Y., Spector, A. A., & Xiong, Z. M. (2014). A synaptogenic amide N-docosahexaenoylethanolamide promotes hippocampal development. Prostaglandins & Other Lipid Mediators, 96(1-4), 114-120.
Kim, J. W., Chen, J., Woodward, A. M., Blanchard, J. W., Lam, R. S., Augustine, G. J., Bezprozvanny, I., & Kim, T. W. (2017). Deficient phosphatidylinositol 3,5-bisphosphate formation in VAC14-mutated cells alters phosphoinositide distribution in the endolysosomal system. Journal of Biological Chemistry, 292(20), 8447-8456.
Kim, J., & Surh, Y. (2006). The role of 15-deoxy-delta(12,14)-prostaglandin J(2), an endogenous ligand of peroxisome proliferator-activated receptor gamma, in tumor angiogenesis. Biochemical Pharmacology, 66(8), 1525-1532.
Kliewer, S. A., Lenhard, J. M., Willson, T. M., Patel, I., Morris, D. C., & Lehmann, J. M. (2015). A prostaglandin J2 metabolite binds peroxisome proliferator-activated receptor gamma and promotes adipocyte differentiation. Cell, 83(5), 813-819.
Koeberle, A., Pergola, C., Shindou, H., Koeberle, S. C., Shimizu, T., Laufer, S. A., & Werz, O. (2018). Role of p38 mitogen-activated protein kinase in linking stearoyl-CoA desaturase-1 activity with endoplasmic reticulum homeostasis. FASEB Journal, 29(6), 2439-2449.
Krishnamoorthy, S., Recchiuti, A., Chiang, N., Yacoubian, S., Lee, C. H., Yang, R., Petasis, N. A., & Serhan, C. N. (2010). Resolvin D1 binds human phagocytes with evidence for proresolving receptors. Proceedings of the National Academy of Sciences, 107(4), 1660-1665.
Lee, J., Koga, H., Kawaguchi, Y., Tang, W., Wong, E., Gao, Y. S., Pandey, U. B., Kaushik, S., Tresse, E., Lu, J., Taylor, J. P., Cuervo, A. M., & Yao, T. P. (2016). HDAC6 controls autophagosome maturation essential for ubiquitin-selective quality-control autophagy. The EMBO Journal, 29(5), 969-980.
Levy, B. D., Clish, C. B., Schmidt, B., Gronert, K., & Serhan, C. N. (2012). Lipid mediator class switching during acute inflammation: signals in resolution. Nature Immunology, 2(7), 612-619.
Li, J., Guasch-Ferré, M., Li, Y., & Hu, F. B. (2020). Dietary intake and biomarkers of linoleic acid and mortality: systematic review and meta-analysis of prospective cohort studies. The American Journal of Clinical Nutrition, 112(1), 150-167.
Luboshitzky, R., & Lavie, P. (1999). Testosterone and cortisol secretion in normal men and male patients with sleep apnea syndrome. Journal of Andrology, 20(2), 238-243.
Markle, J. G., Frank, D. N., Mortin-Toth, S., Robertson, C. E., Feazel, L. M., Rolle-Kampczyk, U., von Bergen, M., McCoy, K. D., Macpherson, A. J., & Danska, J. S. (2016). Sex differences in the gut microbiome drive hormone-dependent regulation of autoimmunity. Science, 339(6123), 1084-1088.
Marques-Rocha, J. L., Garcia-Lacarte, M., Samblas, M., Bressan, J., Martinez, J. A., & Milagro, F. I. (2022). Regulatory roles of miR-155 and let-7b on the expression of inflammation-related genes in THP-1 cells: effects of fatty acids. Journal of Physiology and Biochemistry, 74(4), 579-589.
McDougle, D. R., Watson, J. E., Abdeen, A. A., Adili, R., Caputo, M. P., Krapf, J. E., Johnson, R. W., Kilian, K. A., Holinstat, M., & Das, A. (2019). Anti-inflammatory ω-3 endocannabinoid epoxides. Proceedings of the National Academy of Sciences, 114(30), E6034-E6043.
Midzak, A. S., Chen, H., Papadopoulos, V., & Zirkin, B. R. (2012). Leydig cell aging and the mechanisms of reduced testosterone synthesis. Molecular and Cellular Endocrinology, 299(1), 23-31.
Miyamoto, J., Igarashi, M., Watanabe, K., Karaki, S. I., Mukouyama, H., Kishino, S., Li, X., Ichimura, A., Irie, J., Sugimoto, Y., Mizutani, Y., Sugawara, T., Miki, T., Ogawa, J., Drucker, D. J., & Kimura, I. (2018). Gut microbiota confers host resistance to obesity by metabolizing dietary polyunsaturated fatty acids. Nature Communications, 10(1), 4007.
O’Shea, E. F., Cotter, P. D., Stanton, C., Ross, R. P., & Hill, C. (2016). Production of bioactive substances by intestinal bacteria as a basis for explaining probiotic mechanisms: Bacteriocins and conjugated linoleic acid. International Journal of Food Microbiology, 152(3), 189-205.
Piomelli, D. (2003). The molecular logic of endocannabinoid signalling. Nature Reviews Neuroscience, 4(11), 873-884.
Qin, X., Qiu, C., & Zhao, L. (2021). Resolvin D1 protects against inflammation and tumorigenesis in colitis-associated cancer by NF-κB/IL-6 axis. Inflammation, 44(1), 227-237.
Roberts, L. D., Murray, A. J., Menassa, D., Ashmore, T., Nicholls, A. W., & Griffin, J. L. (2018). The contrasting roles of PPARδ and PPARγ in regulating the metabolic switch between oxidation and storage of fats in white adipose tissue. Genome Biology, 12(8), R75.
Serhan, C. N., & Levy, B. D. (2018). Resolvins in inflammation: Emergence of the pro-resolving superfamily of mediators. Journal of Clinical Investigation, 128(7), 2657-2669.
Serhan, C. N., Hong, S., Gronert, K., Colgan, S. P., Devchand, P. R., Mirick, G., & Moussignac, R. L. (2002). Resolvins: A family of bioactive products of omega-3 fatty acid transformation circuits initiated by aspirin treatment that counter proinflammation signals. Journal of Experimental Medicine, 196(8), 1025-1037.
Spann, N. J., & Glass, C. K. (2013). Sterols and oxysterols in immune cell function. Nature Immunology, 14(9), 893-900.
Sun, Q., Wu, Y., Zhao, F., & Wang, J. (2017). Maresin 1 ameliorates lung ischemia/reperfusion injury by suppressing oxidative stress via activation of the Nrf-2-mediated HO-1 signaling pathway. Oxidative Medicine and Cellular Longevity, 2017, 9634803.
Tu, P., Chi, L., Bodnar, W., Zhang, Z., Gao, B., Bian, X., Stewart, J., Fry, R., & Lu, K. (2020). Gut microbiome toxicity: Connecting the environment and gut microbiome-associated diseases. Toxics, 8(1), 19.
Ueda, N., Tsuboi, K., & Uyama, T. (2013). Metabolism of endocannabinoids and related N-acylethanolamines: Canonical and alternative pathways. The FEBS Journal, 280(9), 1874-1894.
Vaughn, L. K., Denning, G., Stuhr, K. L., de Wit, H., Hill, M. N., & Hillard, C. J. (2010). Endocannabinoid signalling: Has it got rhythm? British Journal of Pharmacology, 160(3), 530-543.
Walter, P., & Ron, D. (2011). The unfolded protein response: From stress pathway to homeostatic regulation. Science, 334(6059), 1081-1086.
Wang, H., Zhou, L., Gupta, A., Vethanayagam, R. R., Zhang, Y., Unadkat, J. D., & Mao, Q. (2018). Regulation of BCRP/ABCG2 expression by progesterone and 17β-estradiol in human placental BeWo cells. American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism, 290(5), E798-E807.
Watkins, B. A., Kim, J., Kenny, A., Pedersen, T. L., Pappan, K. L., & Newman, J. W. (2016). Circulating levels of endocannabinoids and oxylipins altered by dietary lipids in older women are likely associated with previously identified gene targets. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Molecular and Cell Biology of Lipids, 1861(11), 1693-1704.
Watson, H., Mitra, S., Croden, F. C., Taylor, M., Wood, H. M., Perry, S. L., Spencer, J. A., Quirke, P., Toogood, G. J., Lawton, C. L., Dye, L., Botham, K. M., Dacombe, S. R., Cross, L. M., & Hull, M. A. (2018). A randomised trial of the effect of omega-3 polyunsaturated fatty acid supplements on the human intestinal microbiota. Gut, 67(11), 1974-1983.
Yoshida, K., Hashimoto, M., Hori, R., Adachi, T., Okuyama, H., Orikasa, Y., Nagamine, T., Shimizu, S., Ueno, A., & Morita, N. (2016). Bacterial long-chain polyunsaturated fatty acids: Their biosynthetic genes, functions, and practical use. Marine Drugs, 14(5), 94.
Yurkovetskiy, L., Burrows, M., Khan, A. A., Graham, L., Volchkov, P., Becker, L., Antonopoulos, D., Umesaki, Y., & Chervonsky, A. V. (2019). Gender bias in autoimmunity is influenced by microbiota. Immunity, 39(2), 400-412.