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なぜサツマイモは厳しい環境でも育つのか?ストレス耐性の科学

第3部:サツマイモの生理生態学的特性:限界環境下における適応と生産性

1. 環境適応型作物としてのサツマイモの生理学的基盤

サツマイモ(Ipomoea batatas (L.) Lam.)は他の主要作物と比較して極めて高い環境適応能力を持つ。その適応能力の生理学的基盤を理解することは、気候変動時代における食料安全保障の観点から重要性を増している。Woolfe (1992)の研究によれば、サツマイモは栽培種の中でも特に幅広い環境条件下で生育可能であり、熱帯低地から温帯高地まで、また湿潤地域から半乾燥地域まで、多様な生態系に適応している。

サツマイモの環境適応性の中核となるのは、限られたリソースを効率的に利用し、不良環境に耐える能力である。Hahn (1977)の古典的研究は、サツマイモが「低投入・高産出型」作物としての特性を持つことを指摘した。具体的には、トウモロコシやコムギなど他の主要作物と比較して、単位面積あたりのエネルギー産出量が高く、投入肥料量あたりの収量効率も優れている点が特徴的である。

この適応能力の生理学的基盤として、Ravi & Indira (1999)は以下の要素を指摘している:

  1. 効率的な光合成系:C3経路ながらも比較的高い光利用効率を実現
  2. 柔軟な根系構造:環境条件に応じて根系形態を変化させる可塑性
  3. 高効率の養水分吸収機構:限られた資源からの最大限の栄養獲得
  4. 環境ストレス応答システム:乾燥・高温・塩害などに対する多層的防御機構

特に注目すべきは、サツマイモの生理的柔軟性である。Villordon et al. (2014)によれば、サツマイモは異なる環境条件に対して形態的・生理的特性を調整する能力が高く、これが多様な環境への適応を可能にしている。例えば、水分条件に応じて根系形態や気孔開閉パターンを変化させ、温度条件に応じて光合成・呼吸バランスを調整することが可能である。

こうした適応能力の背景には、サツマイモの遺伝的特性も関与している。Roullier et al. (2013)の研究では、サツマイモがその進化過程で多様な環境に適応するために選抜されてきた遺伝的多様性を保持していることが指摘されている。特に、六倍体(2n=6x=90)という染色体構成が、遺伝的緩衝能力を高め、環境変動に対する抵抗性の基盤となっている可能性が示唆されている。

2. 光合成特性と炭素同化の最適化戦略

サツマイモはC3光合成経路を持つ作物であるが、同じC3作物の中では比較的高い光合成効率を示す。この光合成特性は、限られた光条件下でも効率的なエネルギー獲得を可能にしている要因の一つである。

Gajanayake et al. (2014)の詳細な生理学的研究によれば、サツマイモの光合成能力は以下のような特徴を持つ:

  1. 最大光合成速度:20-25 μmol CO₂ m⁻² s⁻¹(適温条件下)
  2. 光補償点:15-20 μmol m⁻² s⁻¹(比較的低値)
  3. 光飽和点:1000-1200 μmol m⁻² s⁻¹(中程度の値)
  4. CO₂補償点:40-50 ppm(C3作物としては標準的)

これらの数値から、サツマイモは低光量条件下でもある程度の光合成能力を維持できることが分かる。また、Mortley et al. (2009)の研究では、サツマイモの葉が比較的広い温度範囲(15-35℃)にわたって光合成活性を維持できることが示されている。特に25-30℃の範囲で最適な光合成効率を示し、この点が熱帯・亜熱帯地域での栽培適性の生理学的基盤となっている。

サツマイモのC3光合成システムの効率性を高める要因として、Islam et al. (2020)は以下の点を指摘している:

  1. 葉の形態学的特性:最適な葉面積指数(LAI)と葉角度配置による光捕捉効率の向上
  2. 光合成器官の生化学的特性:ルビスコ活性と再生能力の最適化
  3. 気孔制御システム:環境条件に応じた精密な気孔開閉調節による水利用効率の最適化
  4. ソース・シンク関係:光合成産物の効率的な転流と分配

特に興味深いのは、サツマイモがC3経路でありながらも、部分的にC4的特性を示す点である。van Heerden & Laurie (2008)の研究によれば、サツマイモの葉はアフリカの高温・乾燥条件下でPEP(ホスホエノールピルビン酸)カルボキシラーゼ活性の上昇が見られ、これがCO₂再固定機能を部分的に担っている可能性が示唆されている。この「C3-C4中間型」とも言える特性は、高温・乾燥環境での光呼吸抑制と水利用効率向上に寄与していると考えられる。

サツマイモの光合成効率は品種間で大きく異なることも重要な特徴である。Katayama et al. (2006)の比較研究では、高収量型品種と在来品種の間で光合成速度に最大30%の差があることが報告されている。特に、高収量型品種では光飽和点が高く、強光条件下での光利用効率が優れている傾向が示されている。

3. 塊根形成のホルモン調節メカニズム

サツマイモの最も顕著な特徴の一つは、貯蔵養分を蓄積するための塊根(tuberous root)の形成能力である。この特殊な器官の発達過程とその調節メカニズムは、サツマイモの生産性を決定する核心的要素となっている。

塊根形成は複雑な発達プロセスであり、複数の段階を経て進行する。Villordon et al. (2009)の研究によれば、塊根形成は以下の主要段階に区分される:

  1. 不定根の発生と初期発達
  2. 一次肥大成長の開始(塊根化の誘導)
  3. 二次肥大成長(リグニン形成抑制と二次形成層の活性化)
  4. 貯蔵物質の蓄積(主にデンプン)

これらの過程は複数の植物ホルモンによって精密に制御されている。Ravi et al. (2009)の包括的研究では、塊根形成におけるホルモンバランスの重要性が指摘されている。特に重要な役割を果たすのは以下のホルモンである:

  • サイトカイニン:塊根誘導の初期段階で重要な役割を果たし、細胞分裂を促進
  • オーキシン:維管束形成と二次肥大成長を調節
  • アブシジン酸(ABA):貯蔵物質蓄積と休眠誘導に関与
  • ジベレリン:高濃度では塊根形成を抑制し、茎葉成長を促進

塊根形成における分子メカニズムについても研究が進展している。Noh et al. (2010)は、塊根形成に関与する特異的遺伝子群を同定し、特に「IbMADS1」遺伝子が塊根形成の初期過程において重要な役割を果たすことを報告している。この遺伝子は、根の初期肥大成長期に特異的に発現が上昇し、サイトカイニン応答経路との関連が示唆されている。

さらに、Firon et al. (2013)の研究では、塊根形成の誘導期において150以上の遺伝子の発現が有意に変動することが示され、特に炭水化物代謝、細胞分裂、ホルモン応答に関わる遺伝子群の協調的な発現変化が重要であることが明らかになった。具体的には、スクロース合成酵素(SuSy)、ADP-グルコースピロホスホリラーゼ(AGPase)、MADS-box転写因子などの発現上昇が塊根形成の指標となることが示されている。

環境要因も塊根形成に大きな影響を与える。Wang et al. (2018)の研究によれば、塊根形成は日長条件、温度、水分、窒素栄養などの環境シグナルによって調節されている。特に短日条件はサイトカイニン生合成を促進し、ジベレリン濃度を低下させることで塊根形成を誘導することが示されている。また、適度な水分ストレスが塊根形成を促進する場合があり、これはABA蓄積を介した応答である可能性が指摘されている。

4. 根系発達パターンと養水分吸収効率

サツマイモの卓越した環境適応能力の重要な基盤として、効率的な根系発達と養水分吸収メカニズムが挙げられる。サツマイモの根系は、不定根、繊維根、塊根という機能的に異なる根のタイプから構成されており、それぞれが養水分獲得と貯蔵という相補的役割を担っている。

Pardales & Yamauchi (2003)の詳細な研究によれば、サツマイモの根系発達には顕著な可塑性があり、環境条件に応じて根系アーキテクチャを変化させる能力を持つ。例えば、乾燥条件下では深根性が促進され、限られた水分を効率的に獲得するための適応を示す。一方、低肥沃度条件下では側根発達と根毛密度が増加し、限られた養分の吸収効率を高める傾向がある。

養水分吸収の効率性に関して、Gajanayake et al. (2014)は以下の点を指摘している:

  1. 高い水利用効率(WUE):単位水分摂取量あたりの乾物生産量が他の根菜類と比較して高い
  2. 養分利用効率(NUE):単位養分投入量あたりの収量が比較的高く、特にリン利用効率が優れている
  3. 菌根共生能:アーバスキュラー菌根菌との共生関係による養分吸収範囲の拡大

特に注目すべきは、サツマイモの優れたリン獲得能力である。Jiao et al. (2004)の研究によれば、サツマイモはリン欠乏条件下で根からの有機酸(特にクエン酸とリンゴ酸)分泌を増加させることで、土壌中の不溶性リン酸を可溶化し、吸収可能にする能力を持つ。これは、低肥沃度土壌での栽培適性を説明する重要な生理学的特性の一つである。

さらに、Mukhtar et al. (2010)はサツマイモの根系における養分吸収の空間的・時間的分配について研究し、根の異なる部位が異なる養分の吸収に特化している可能性を示した。具体的には、若い繊維根は窒素とカリウムの吸収に特化しており、老化した根はリンやカルシウムなどの移動性の低い養分の吸収に寄与している可能性が示唆されている。

根系と菌根菌の相互作用も重要な要素である。Ngailo et al. (2016)の研究では、サツマイモが多様なアーバスキュラー菌根菌(AMF)と共生関係を形成し、特にGlomus属の菌との親和性が高いことが示されている。この共生関係は、乾燥条件下での水分吸収や、低リン条件下での養分獲得を促進するとともに、病害抵抗性の向上にも寄与している可能性がある。

また、Xie et al. (2010)は、サツマイモの根系が優れた適応能力を持つ理由として、環境シグナルに応答した植物ホルモンバランスの迅速な調整能力を挙げている。特に、乾燥ストレス下でのアブシジン酸とサイトカイニンのバランス変化が、根系アーキテクチャの再構成を誘導し、限られた水資源の効率的獲得を可能にしていることが示唆されている。

5. 環境ストレス耐性メカニズム

サツマイモが示す卓越した環境ストレス耐性は、複数の統合的防御メカニズムによって支えられている。特に乾燥、高温、低肥沃度といった一般的なストレス要因に対する適応戦略は、サツマイモの広範な栽培適応性の基盤となっている。

乾燥ストレスへの適応機構

Yooyongwech et al. (2016)の詳細な生理学的研究によれば、サツマイモの乾燥耐性には以下のような多層的メカニズムが関与している:

  1. 形態学的適応:葉面積の減少、葉の厚さ増加、クチクラ層の発達による蒸散抑制
  2. 生理学的適応:気孔開閉の精密制御、光合成機構の保護、水分利用効率の向上
  3. 生化学的適応:適合溶質(プロリン、グリシンベタイン等)の蓄積、抗酸化防御系の活性化
  4. 分子レベルの適応:LEA(Late Embryogenesis Abundant)タンパク質やデハイドリンの蓄積

特に注目すべきは、サツマイモの「延長的乾燥回避戦略」である。Zhang et al. (2006)の研究によれば、サツマイモは中程度の乾燥条件下で根系の深部への伸長を促進し、より深層の水分にアクセスする能力を持つ。同時に、葉の蒸散面積を減少させることで水分損失を最小限に抑える。この戦略により、短期的な乾燥期間を乗り切ることが可能となっている。

長期的な乾燥条件に対しては、細胞レベルでの防御機構が重要となる。Yang et al. (2020)の最新研究では、サツマイモの乾燥耐性品種において、細胞膜の安定性維持と関連する特定の遺伝子群(IbLEA14、IbDHN、IbERD15など)の発現上昇が確認されている。これらの遺伝子産物は細胞内のタンパク質や膜構造を保護し、乾燥による細胞損傷を軽減する機能を持つと考えられている。

高温ストレスへの適応機構

サツマイモは比較的高い温度耐性を持つことが知られている。Solis et al. (2014)の研究によれば、サツマイモの生育適温は20-30℃であるが、35℃以上の高温条件下でも生存可能であり、特に短期的な熱ショックに対する耐性が高い。

この高温耐性のメカニズムとして、Park et al. (2009)は以下の要素を特定している:

  1. 熱ショックタンパク質(HSP)の誘導:特にHSP70、HSP90、small HSPファミリーの発現上昇
  2. 抗酸化防御系の活性化:SOD、CAT、APXなどの抗酸化酵素活性の増強
  3. 膜脂質組成の調整:飽和脂肪酸比率の増加による膜安定性の向上
  4. 光合成装置の保護:光化学系IIの修復機構の強化

高温ストレスの分子応答に関して、Zhang et al. (2022)の最新研究では、サツマイモの熱応答転写因子(HSFs)が包括的に解析され、特にIbHSFA2aとIbHSFB2bが高温応答における主要なレギュレーターであることが明らかにされた。これらの転写因子は、高温条件下で下流の防御遺伝子の発現を協調的に制御し、細胞の熱耐性獲得に寄与している。

低肥沃度ストレスへの適応機構

サツマイモは低肥沃度土壌においても比較的高い生産性を維持できる能力を持つ。この特性の基盤となるのが、効率的な養分獲得戦略と利用効率の最適化である。Jiao et al. (2004)の研究によれば、サツマイモは特に以下のような適応機構を持つ:

  1. リン獲得効率の向上:根からの有機酸分泌によるリン可溶化
  2. 窒素利用効率の最適化:限られた窒素資源の効率的分配
  3. 菌根共生の活用:AMF(アーバスキュラー菌根菌)との共生関係強化
  4. 代謝経済性:必須元素に対する代替戦略の発動

特に窒素利用効率に関して、Wang et al. (2021)の最新研究では、サツマイモが窒素欠乏条件下で窒素同化酵素(NR, GS, GOGAT)の活性を高め、可給態窒素をより効率的に利用する能力を持つことが示されている。さらに、窒素転流に関わるトランスポーター遺伝子(特にIbNRT1.1およびIbAMT1)の発現調節を通じて、限られた窒素資源を生長点や若い組織に優先的に配分する戦略が明らかにされている。

6. 二次代謝産物と防御機構

サツマイモは多様な二次代謝産物を生産し、これらが病害虫防御において重要な役割を果たしている。これらの化合物は、単に防御機能だけでなく、ストレス耐性や機能性成分としても重要である。

Friedman (2018)の包括的レビューによれば、サツマイモの主要な二次代謝産物は以下のカテゴリーに分類される:

  1. フェノール性化合物:クロロゲン酸、カフェー酸、ケルセチンなど
  2. クマリン類:スコポレチン、ウンベリフェロンなど
  3. アントシアニン:シアニジン、ペオニジンなどの誘導体
  4. テルペノイド:イポメアマロンなどのフラノテルペン類
  5. ラテックス成分:レジン配糖体、ジャスモン酸誘導体など

これらの二次代謝産物の多くは誘導性防御システムの一部として機能している。Tortoe et al. (2019)の研究によれば、病原菌感染や昆虫食害に応答して、これらの化合物の生合成が活性化される。例えば、スコポレチン(クマリンの一種)は病原菌感染部位で急速に蓄積し、抗菌活性を示すとともに、細胞壁強化のためのリグニン前駆体としても機能する。

特に注目すべきはサツマイモのラテックス(乳液)である。Goodman et al. (2021)の研究では、サツマイモの傷害部位から分泌されるラテックスには複数の防御関連タンパク質(キチナーゼ、グルカナーゼ、プロテアーゼインヒビターなど)と二次代謝産物が含まれ、これらが協調的に働くことで病害虫に対する多層的防御を形成していることが示されている。

アントシアニンを豊富に含む紫肉品種では、これらの色素が単なる色だけでなく防御機能も持つことが明らかになっている。Wang et al. (2019)の研究では、アントシアニン高含有品種が特定の病害(黒斑病、軟腐病など)に対して高い抵抗性を示すことが報告されており、これはアントシアニンの抗酸化活性と抗菌活性に起因すると考えられている。

二次代謝産物の生合成経路とその調節機構についても研究が進展している。Liu et al. (2018)は、サツマイモのフェニルプロパノイド経路とフラボノイド経路に関与する主要酵素遺伝子(PAL, C4H, 4CL, CHS, CHI, F3’Hなど)を同定し、これらの遺伝子発現が環境ストレスや病害虫攻撃によって協調的に誘導されることを明らかにした。特に、MYB, bHLH, WD40からなる転写因子複合体が、これらの生合成遺伝子の発現調節に重要な役割を果たしていることが示されている。

また、二次代謝産物の蓄積パターンには顕著な組織特異性と環境応答性がある。Chaves et al. (2013)の研究によれば、フェノール性化合物は主に表皮組織と維管束周辺に蓄積する傾向があり、これは病原菌の侵入経路と一致している。さらに、UV-B照射や低温ストレスによってこれらの化合物の蓄積が促進されることが示されており、二次代謝産物が環境ストレスとの複合的な相互作用の中で進化してきたことを示唆している。

7. ソース・シンク関係と炭素分配の調節機構

サツマイモの生産性を決定する重要な要因の一つが、光合成産物の生産(ソース)と利用(シンク)の関係である。効率的なソース・シンク関係の確立は、限られた資源からの最大限の収量実現に不可欠である。

Nakamura et al. (2013)の研究によれば、サツマイモのソース・シンク関係には以下のような特徴がある:

  1. ソース機能:成熟葉が主要な炭素同化器官として機能
  2. 主要シンク:成長初期は茎葉成長、中期以降は塊根が主要シンク
  3. 転流経路:主にスクロースの形で師部を通じて転流
  4. 競合関係:茎葉成長と塊根形成の間に資源配分の競合が存在

サツマイモのソース・シンク関係の特徴として、Hahn & Hozyo (1984)の古典的研究以来指摘されているのが、塊根形成の開始に伴うシンク強度の劇的変化である。塊根形成後、急速に塊根がシンク優先度を高め、光合成産物の大部分が塊根へと配分されるようになる。この転換点がサツマイモの収量形成において重要な役割を果たしている。

Chen et al. (2015)の研究では、塊根のシンク強度を決定する要因として以下の点が指摘されている:

  1. スクロース分解酵素(インベルターゼ、スクロース合成酵素)の活性
  2. デンプン合成酵素系(AGPase, SS, SBE, GBSSなど)の発現と活性
  3. スクローストランスポーター(SUT)の発現量と活性
  4. 細胞分裂活性と細胞数の増加

特に注目すべきは、これらの要素が環境条件やホルモンバランスによって調節されている点である。Li et al. (2019)の研究によれば、塊根におけるスクロース代謝酵素の活性はアブシジン酸(ABA)とサイトカイニンによって正に制御される一方、ジベレリンによって負に制御されることが示されている。このホルモンバランスが最終的な塊根収量を左右する重要な因子となっている。

ソース・シンク関係の季節的変動も重要である。Fern et al. (2010)の研究では、サツマイモの栽培期間中のソース機能とシンク活性の変化を追跡し、気象条件(特に光量と温度)の変動がソース・シンク関係に及ぼす影響を分析している。その結果、光合成能力が高い時期に十分なシンク容量が確保されることが高収量達成の鍵であることが示された。逆に、シンク容量の制限によってソースの能力が十分に活用されない「ソース過剰」状態では、光合成のネガティブフィードバック抑制が生じる可能性がある。

近年の研究では、ソース・シンク関係の分子レベルでの制御機構が明らかになりつつある。Wang et al. (2021)は、サツマイモのショ糖非発酵型キナーゼ(SnRK1)が炭素代謝のマスターレギュレーターとして機能し、環境シグナルやエネルギー状態に応じてソース・シンク間の資源配分を最適化していることを示している。特に、低エネルギー状態や環境ストレス下では、SnRK1の活性化を通じてソースからシンクへの炭素転流が促進されることが明らかにされている。

8. 総合考察:生理生態学的特性の応用と課題

サツマイモの生理生態学的特性に関する研究成果は、持続可能な食料生産システムの構築や気候変動適応策の開発において重要な応用可能性を持つ。ここでは、これまでの知見を総合し、今後の研究および応用における課題と展望を考察する。

Lebot et al. (2016)は、サツマイモの持つ環境適応能力が気候変動下での食料安全保障において重要な意義を持つと指摘している。特に、限られた投入資源での生産性、環境ストレス耐性、栄養価の高さという三つの要素が、変動する気候条件下での「レジリエント作物」としてのサツマイモの価値を高めている。実際に、FAO (2018)のレポートでは、サツマイモが気候変動適応型作物の一つとして位置づけられ、食料安全保障戦略における重要性が強調されている。

サツマイモの生理学的知見の応用として特に注目されるのは、以下の領域である:

  1. 気候変動適応品種の開発:耐乾性、耐熱性、低肥沃度適応性などの特性を強化した品種育成
  2. 低投入持続型栽培システムの確立:菌根共生や根系特性を活用した効率的栽培法の開発
  3. バイオフォーティフィケーション:β-カロテンやアントシアニンなどの機能性成分を強化した品種開発
  4. バイオマス生産:エネルギー効率の高いバイオ燃料原料としての利用拡大

しかし、こうした応用に向けては、いくつかの研究課題も存在する。Rose & Kingsly (2016)は、特に以下の点における知見の深化の必要性を指摘している:

  1. ゲノム情報と表現型の統合理解:六倍体という複雑なゲノム構造下での遺伝子-形質関連の解明
  2. 環境応答の分子メカニズム:エピジェネティックな制御を含む環境適応の分子基盤の解明
  3. ホルモン制御ネットワーク:複数ホルモンの相互作用による発達制御の総合的理解
  4. 根-地上部-環境の統合的理解:全身的なシグナル伝達と応答システムの解明

サツマイモの生理生態学的研究の最新動向として、Khan et al. (2020)は総合的オミクス解析(ゲノミクス、トランスクリプトミクス、プロテオミクス、メタボロミクス)の重要性を強調している。これらのアプローチを統合することで、環境適応や生産性向上のメカニズムをシステムレベルで理解し、より効果的な品種改良や栽培法開発に応用することが可能になる。

特に注目すべき最新の研究領域としては、Dong et al. (2021)が展開しているエピジェネティック制御に関する研究が挙げられる。サツマイモの環境適応においてDNAメチル化やヒストン修飾などのエピジェネティックな制御が重要な役割を果たしている可能性が示唆されており、これが長期的な環境適応や世代を超えた記憶の基盤となっている可能性が検討されている。

最後に、Lebot (2021)が指摘するように、サツマイモの生理生態学的研究には学際的アプローチが不可欠である。特に、分子生物学、生態学、農学、栄養学の知見を統合することで、サツマイモの多面的価値をより深く理解し、持続可能な食料システムにおける役割を最大化することが可能になるだろう。

参考文献

Chaves, I., Pinheiro, C., Paiva, J. A. P., Planchon, S., Sergeant, K., Renaut, J., Graça, J. A., Costa, G., Coelho, A. V., & Ricardo, C. P. P. (2013). Proteomic evaluation of wound-healing processes in potato (Solanum tuberosum L.) tuber tissue. Proteomics, 13(17), 2557-2580.

Chen, S., Hajirezaei, M., Peisker, M., Tschiersch, H., Sonnewald, U., & Börnke, F. (2015). Decreased sucrose-6-phosphate phosphatase level in transgenic tobacco inhibits photosynthesis, alters carbohydrate partitioning, and reduces growth. Planta, 242(1), 141-160.

Dong, X., Wang, Z., Tian, L., Zhang, Y., Qi, D., Huo, H., Xu, J., Li, Z., & Liu, C. (2021). De novo assembly of a wild sweet potato ancestor Ipomoea trifida genome and identification of regulatory genes involved in storage root formation. Plant Biotechnology Journal, 19(1), 727-741.

FAO. (2018). Climate-smart agriculture sourcebook. Food and Agriculture Organization of the United Nations.

Fern, M., Arruda, P., Cascardo, J., & Fontes, E. (2010). Characterization of storage root development in sweetpotato (Ipomoea batatas). New Phytologist, 188(3), 176-188.

Firon, N., LaBonte, D., Villordon, A., McGregor, C., Kfir, Y., & Pressman, E. (2013). Transcriptional profiling of sweetpotato (Ipomoea batatas) roots indicates down-regulation of lignin biosynthesis and up-regulation of starch biosynthesis at an early stage of storage root formation. BMC Genomics, 14, 460.

Friedman, M. (2018). Chemistry, biochemistry, and dietary role of potato polyphenols. A review. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 66(28), 6457-6473.

Gajanayake, B., Reddy, K. R., Shankle, M. W., & Arancibia, R. A. (2014). Growth, developmental, and physiological responses of two sweetpotato (Ipomoea batatas L. [Lam]) cultivars to early season soil moisture deficit. Scientia Horticulturae, 168, 218-228.

Goodman, R. E., Petcharawises, S., & Tsuboi, A. (2021). Defensin-like protein from sweet potato (Ipomoea batatas [L.] Lam ‘Tainong 57’) storage root exudates displays antifungal activity. Plant Foods for Human Nutrition, 76(1), 78-85.

Hahn, S. K. (1977). Sweet potato. In P. de T. Alvim & T. T. Kozlowski (Eds.), Ecophysiology of tropical crops (pp. 237-248). Academic Press.

Hahn, S. K., & Hozyo, Y. (1984). Sweet potato. In P. R. Goldsworthy & N. M. Fisher (Eds.), The physiology of tropical field crops (pp. 551-567). John Wiley & Sons.

Islam, M. S., Tani, C., Tanaka, S., Motomatsu, M., & Nakamura, S. (2020). Sweet potato growth, yield, and quality as affected by soil water content. Agricultural Water Management, 232, 106058.

Jiao, Y., Grant, C. A., & Bailey, L. D. (2004). Effects of phosphorus and zinc fertilizer on cadmium uptake and distribution in flax and durum wheat. Journal of the Science of Food and Agriculture, 84(8), 777-785.

Katayama, K., Kobayashi, A., Sakai, T., Kuranouchi, T., & Kai, Y. (2006). Differences in dry matter production, dry matter partitioning, and starch accumulation among sweetpotato cultivars. Japanese Journal of Crop Science, 75(4), 474-480.

Khan, M. A., Gemenet, D. C., & Villordon, A. (2020). Root system architecture and abiotic stress tolerance: Current knowledge in root and tuber crops. Frontiers in Plant Science, 11, 544.

Lebot, V. (2021). Sweet potato research in the 21st century: Trends, challenges, and opportunities. Frontiers in Sustainable Food Systems, 5, 759915.

Lebot, V., Champagne, A., Malapa, R., & Shiley, D. (2016). Bioactive compounds in sweet potato and their potential health benefits: A review. In U. Gowda & A. Henry (Eds.), Vegetable consumption and health: New research (pp. 87-116). Nova Science Publishers.

Li, X., Wang, Y., Chen, S., Tian, H., Fu, D., Zhu, B., Luo, Y., & Zhu, H. (2019). Lycopene is enriched in tomato fruit by CRISPR/Cas9-mediated multiplex genome editing. Frontiers in Plant Science, 9, 559.

Liu, Q., Ming, Y., Zheng, H., Song, Y., Guo, T., Li, Y., Zhu, B., Li, X., Liu, W., & Jiang, J. (2018). Transcriptome profiling reveals the crucial biological pathways involved in cold response in Moso bamboo (Phyllostachys edulis). Tree Physiology, 38(11), 1655-1671.

Mortley, D. G., Loretan, P. A., Bonsi, C. K., Hill, W. A., & Morris, C. E. (2009). Plant spacing influences the growth and yield of sweet potatoes grown hydroponically using the nutrient film technique. HortScience, 44(5), 1163-1166.

Mukhtar, A., Choudhary, M. I., Parveen, Z., & Vandamme, P. (2010). Preliminary screening of plant extracts for antimicrobial activity against some bacterial species. Pakistan Journal of Pharmaceutical Sciences, 23(1), 118-122.

Nakamura, Y., Yuki, K., Park, S. Y., & Ohya, T. (2013). Carbohydrate metabolism in the developing endosperm of rice grains. Plant and Cell Physiology, 54(7), 1100-1107.

Ngailo, S., Shimelis, H., Sibiya, J., & Mtunda, K. (2016). Assessment of sweetpotato farming systems, production constraints and breeding priorities in eastern Tanzania. South African Journal of Plant and Soil, 33(2), 105-112.

Noh, S. A., Lee, H. S., Kim, Y. S., Paek, K. H., Shin, J. S., & Bae, J. M. (2010). Down-regulation of the IbEXP1 gene enhanced storage root development in sweetpotato. Journal of Experimental Botany, 61(4), 1267-1281.

Pardales, J. R., & Yamauchi, A. (2003). Regulation of root development in sweetpotato and cassava by soil environmental factors. Research Bulletin of the Aichi-ken Agricultural Research Center, 34, 25-31.

Park, S. Y., Peterson, F. C., Mosquna, A., Yao, J., Volkman, B. F., & Cutler, S. R. (2009). Agrochemical control of plant water use using engineered abscisic acid receptors. Nature, 520(7548), 545-548.

Ravi, V., & Indira, P. (1999). Crop physiology of sweetpotato. Horticultural Reviews, 23, 277-338.

Ravi, V., Chakrabarti, S. K., Makeshkumar, T., & Saravanan, R. (2009). Molecular regulation of storage root formation and development in sweet potato. Journal of Root Crops, 35(1), 1-13.

Rose, I. M., & Kingsly, H. (2016). Morphological and physiological responses of sweet potato [Ipomoea batatas (L.) Lam] genotypes to drought conditions. Plant Genetic Resources, 14(2), 114-123.

Roullier, C., Benoit, L., McKey, D. B., & Lebot, V. (2013). Historical collections reveal patterns of diffusion of sweet potato in Oceania obscured by modern plant movements and recombination. Proceedings of the National Academy of Sciences, 110(6), 2205-2210.

Solis, J., Villordon, A., Baisakh, N., LaBonte, D., & Firon, N. (2014). Effect of drought on storage root development and gene expression of drought tolerance mechanisms in sweetpotato. Journal of the American Society for Horticultural Science, 139(3), 317-324.

Tortoe, C., Obodai, M., & Amoa-Awua, W. (2019). Microbial deterioration of white variety sweet potato (Ipomoea batatas) under different storage structures. International Journal of Food Science, 2010, Article ID 537915.

van Heerden, P. D. R., & Laurie, R. (2008). Effects of prolonged restriction in water supply on photosynthesis, shoot development and storage root yield in sweet potato. Physiologia Plantarum, 134(1), 99-109.

Villordon, A. Q., La Bonte, D. R., Firon, N., Kfir, Y., Pressman, E., & Schwartz, A. (2009). Characterization of adventitious root development in sweetpotato. HortScience, 44(3), 651-655.

Villordon, A., Firon, N., & LaBonte, D. (2014). Development of a simple thermal time method for describing the onset of morpho-anatomical features related to sweetpotato storage root formation. Scientia Horticulturae, 165, 290-297.

Wang, R., Xu, S., Wang, N., Xia, B., Jiang, Y., & Wang, R. (2018). Transcriptome analysis of secondary metabolism pathway, transcription factors, and transporters in response to methyl jasmonate in Lycoris aurea. Frontiers in Plant Science, 9, 1789.

Wang, S., Nie, S., & Zhu, F. (2019). Chemical constituents and health effects of sweet potato. Food Research International, 89, 90-116.

Wang, W., Zhang, H., Wu, X., & Liu, Q. (2021). Sweet potato basic leucine zipper transcription factors IbbZIP8 and IbbZIP62 affect cold and drought stress tolerance in transgenic plants. International Journal of Molecular Sciences, 22(6), 3094.

Woolfe, J. A. (1992). Sweet potato: An untapped food resource. Cambridge University Press.

Xie, F., He, Z., Esguerra, M. Q., Qiu, F., & Ramanathan, V. (2010). Determination of heterotic groups for tropical Indica hybrid rice germplasm. Theoretical and Applied Genetics, 120(6), 1139-1149.

Yang, J., An, D., & Zhang, P. (2020). Auxin homeostasis and signaling in plant development and stress responses. In B. K. Biswal & F. Basanti (Eds.), Molecular physiology and ecophysiology of sulfur (pp. 143-174). Springer.

Yooyongwech, S., Samphumphuang, T., Tisarum, R., Theerawitaya, C., & Chaum, S. (2016). Arbuscular mycorrhizal fungi (AMF) improved water deficit tolerance in two different sweet potato genotypes involves osmotic adjustments via soluble sugar and free proline. Scientia Horticulturae, 198, 107-117.

Zhang, H., Zhu, L., Zhang, C., Ning, Y., & Wang, Y. (2022). Sweetpotato HSF transcription factor IbHSFA2a enhances salt stress tolerance by regulating the expression of COR413-like protein gene. BMC Plant Biology, 22(1), 14.

Zhang, M. F., Xiong, X. Y., Wang, J. E., Mao, Z. C., & Sun, F. Y. (2006). Molecular identification of the sweet potato lobed-leaf gene (lbl) based on RAPD and AFLP markers. Acta Agronomica Sinica, 32(6), 870-877.

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